| 缩写词 | 第1-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-12页 |
| 1 前言 | 第12-22页 |
| ·盐胁迫对植物生长的影响 | 第12-13页 |
| ·植物对于盐胁迫的应答反应 | 第13-14页 |
| ·植物气体激素乙烯调节盐胁迫反应 | 第14-18页 |
| ·乙烯与ROS | 第18-20页 |
| ·立题依据 | 第20-22页 |
| 2 材料与方法 | 第22-36页 |
| ·实验材料 | 第22页 |
| ·实验试剂 | 第22页 |
| ·实验溶剂 | 第22-24页 |
| ·常用溶剂 | 第22-23页 |
| ·过氧化氢探针 | 第23页 |
| ·GUS 染液 | 第23-24页 |
| ·实验所用引物 | 第24-25页 |
| ·拟南芥纯合体鉴定所用引物 | 第24页 |
| ·半定量鉴定基因表达所用引物 | 第24页 |
| ·构建载体所用引物 | 第24-25页 |
| ·实验方法 | 第25-36页 |
| ·拟南芥的种植 | 第25页 |
| ·拟南芥基因组 DNA 提取 | 第25-26页 |
| ·拟南芥总 RNA 提取 | 第26页 |
| ·反转录制备拟南芥cDNA | 第26页 |
| ·DNA 琼脂糖凝胶电泳 | 第26-27页 |
| ·T-DNA 插入纯合体的筛选方法 | 第27页 |
| ·目的基因的扩增 | 第27-28页 |
| ·PCR 产物的回收与纯化 | 第28页 |
| ·载体及基因的酶切及连接 | 第28-29页 |
| ·大肠杆菌感受态细胞的制备及转化 | 第29-30页 |
| ·重组质粒的鉴定 | 第30页 |
| ·农杆菌感受态细胞制备与转化及农杆菌介导的拟南芥转基因植物筛 选 | 第30-31页 |
| ·DAB 染色 | 第31页 |
| ·β-葡萄糖苷酸酶（GUS）的组织化学染色 | 第31-32页 |
| ·酵母双杂交 | 第32-33页 |
| ·双分子荧光互补技术 | 第33页 |
| ·激光共聚焦扫描法检测 H_2O_2 含量 | 第33页 |
| ·半定量PCR 检测基因表达情况 | 第33-34页 |
| ·CAT 活性测定 | 第34-36页 |
| 3 结果与分析 | 第36-50页 |
| ·纯合体鉴定 | 第36-37页 |
| ·表型实验 | 第37-39页 |
| ·萌发 | 第37-38页 |
| ·根伸长 | 第38-39页 |
| ·半定量 | 第39-40页 |
| ·组织化学染色法监测NaCl 影响AtREBA/B 基因表达 | 第40-42页 |
| ·AtREBA/B 因子之间的互作 | 第42-45页 |
| ·酵母双杂交(AtREBA pACT2-AtREBB pAC2) | 第42-43页 |
| ·双分子荧光互补(AtREBA YNE-AtREBB YCE) | 第43-44页 |
| ·NaCl 对AtREBA/B 互作调节 | 第44-45页 |
| ·AtREBA 对于AtRBOHD/F 表达的影响 | 第45-46页 |
| ·盐处理对突变体中ROS 代谢的影响 | 第46-50页 |
| ·DAB 染色 | 第46页 |
| ·H_20_2 含量检测 | 第46-47页 |
| ·CAT 酶活性测定 | 第47-50页 |
| 4 讨论 | 第50-52页 |
| ·AtREBA/B 参与植物应对盐胁迫 | 第50页 |
| ·AtREBA/B 的相互作用机制分析 | 第50-51页 |
| ·AtREBA/B 参与NaCl 诱导的ROS 代谢调节 | 第51-52页 |
| 5 结论 | 第52-54页 |
| 参考文献 | 第54-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
