| 致谢 | 第1-13页 |
| 摘要 | 第13-16页 |
| Abstract | 第16-21页 |
| 第1章 过氧化氢在植物对铝毒胁迫响应中的作用及其机理的研究进展 | 第21-36页 |
| ·H_2O_2的产生与清除 | 第22-25页 |
| ·H_2O_2的产生 | 第22-23页 |
| ·H_2O_2的清除 | 第23-25页 |
| ·植物体内的H_2O_2对铝胁迫的响应 | 第25-28页 |
| ·铝胁迫下植物体内H_2O_2含量变化 | 第25页 |
| ·铝胁迫下H_2O_2引起氧化伤害 | 第25-26页 |
| ·铝胁迫下H_2O_2引起细胞死亡 | 第26-27页 |
| ·铝胁迫下H_2O_2诱导抗氧化系统响应 | 第27-28页 |
| ·植物体内抗氧化系统对铝胁迫的响应 | 第28-30页 |
| ·酶促抗氧化系统对铝胁迫的响应 | 第28-29页 |
| ·非酶抗氧化剂对铝胁迫的响应 | 第29-30页 |
| ·H_2O_2诱导植物抗逆性 | 第30-31页 |
| ·逆境胁迫下H_2O_2参与的信号转导途径 | 第31-32页 |
| ·逆境胁迫下H_2O_2对基因表达的调控作用 | 第32-33页 |
| ·问题的提出和技术路线 | 第33-36页 |
| 第2章 铝对不同小麦基因型根尖H_2O_2代谢和抗氧化活性的影响 | 第36-59页 |
| ·引言 | 第36-37页 |
| ·材料与方法 | 第37-42页 |
| ·植物材料与培养 | 第37-38页 |
| ·铝处理的剂量效应试验 | 第38页 |
| ·铝处理的时间效应试验 | 第38页 |
| ·小麦相对根系伸长率的测定 | 第38页 |
| ·小麦根尖铝含量的测定 | 第38页 |
| ·小麦根尖丙二醛(MDA)含量的测定 | 第38-39页 |
| ·小麦根尖伊文思兰(Evans blue)吸收量的测定 | 第39页 |
| ·小麦根尖O_2~-含量的测定 | 第39页 |
| ·小麦根尖H_2O_2含量的测定 | 第39页 |
| ·小麦根尖抗氧化系统活性的测定 | 第39-42页 |
| ·粗酶提取液的制备 | 第39-40页 |
| ·抗氧化酶活性 | 第40-41页 |
| ·非酶抗氧化剂含量 | 第41页 |
| ·抗氧化活性 | 第41-42页 |
| ·数据分析 | 第42页 |
| ·结果与分析 | 第42-55页 |
| ·铝对2个小麦基因型根系伸长的影响 | 第42-44页 |
| ·不同铝浓度对根系伸长的影响 | 第42-43页 |
| ·不同铝处理时间对根系伸长的影响 | 第43-44页 |
| ·铝对根尖铝含量的影响 | 第44-46页 |
| ·不同铝浓度对根尖铝含量的影响 | 第44-45页 |
| ·不同铝处理时间对根尖铝含量的影响 | 第45-46页 |
| ·铝对根尖MDA含量的影响 | 第46-48页 |
| ·不同铝浓度对根尖MDA含量的影响 | 第46-47页 |
| ·不同铝处理时间对根尖MDA含量的影响 | 第47-48页 |
| ·铝对根尖Evans blue吸收量的影响 | 第48-50页 |
| ·不同铝浓度对根尖Evans blue吸收量的影响 | 第48-49页 |
| ·不同铝处理时间对根尖Evans blue吸收量的影响 | 第49-50页 |
| ·铝对根尖ROS含量的影响 | 第50-52页 |
| ·不同铝浓度对根尖H_2O_2含量的影响 | 第50-51页 |
| ·不同铝处理时间对根尖O_2~(·-)和H_2O_2含量的影响 | 第51-52页 |
| ·铝对根尖抗氧化防御系统的影响 | 第52-55页 |
| ·铝对根尖抗氧化酶活性的影响 | 第52-54页 |
| ·铝对根尖非酶抗氧化剂含量的影响 | 第54-55页 |
| ·铝对根尖总抗氧化活性的影响 | 第55页 |
| ·讨论 | 第55-58页 |
| ·本章小结 | 第58-59页 |
| 第3章 铝胁迫下不同小麦基因型根系中铝和H_2O_2的分布特征及其与耐铝性的关系 | 第59-75页 |
| ·引言 | 第59-60页 |
| ·材料与方法 | 第60-61页 |
| ·植物材料与培养 | 第60页 |
| ·小麦不同根段伸长量的测定 | 第60页 |
| ·小麦不同根段铝含量的测定 | 第60页 |
| ·小麦不同根段MDA含量的测定 | 第60页 |
| ·小麦不同根段Evans blue吸收量的测定 | 第60页 |
| ·小麦不同根段H_2O_2和O_2~(·-)含量的测定 | 第60页 |
| ·小麦不同根段抗氧化系统活性测定 | 第60-61页 |
| ·粗酶提取液的制备 | 第60-61页 |
| ·抗氧化酶活性 | 第61页 |
| ·非酶抗氧化剂含量 | 第61页 |
| ·铝和ROS在小麦根系分布情况的显微观察 | 第61页 |
| ·植物样品前处理及相关仪器 | 第61页 |
| ·染色处理及观察方法 | 第61页 |
| ·数据分析 | 第61-62页 |
| ·结果与分析 | 第62-72页 |
| ·铝对不同根段伸长的影响 | 第62-63页 |
| ·铝在不同根段的含量与空间分布 | 第63-64页 |
| ·铝对不同根段亚细胞结构的影响 | 第64-66页 |
| ·铝对不同根段MDA含量的影响 | 第66页 |
| ·铝对不同根段可溶性蛋白质含量的影响 | 第66-67页 |
| ·铝对不同根段Evans blue吸收量的影响 | 第67-68页 |
| ·铝对不同根段ROS含量的影响 | 第68-70页 |
| ·铝对不同根段抗氧化防御系统的影响 | 第70-72页 |
| ·抗氧化酶活性 | 第70-71页 |
| ·非酶抗氧化剂含量 | 第71-72页 |
| ·讨论 | 第72-74页 |
| ·本章小结 | 第74-75页 |
| 第4章 H_2O_2预处理对不同小麦基因型铝毒胁迫的缓解效应及其机制 | 第75-88页 |
| ·引言 | 第75-76页 |
| ·材料与方法 | 第76-77页 |
| ·植物材料与培养 | 第76页 |
| ·适宜的H_2O_2预处理浓度的筛选 | 第76页 |
| ·小麦相对根系伸长率(RRE)的测定 | 第76页 |
| ·小麦根尖MDA含量的测定 | 第76-77页 |
| ·小麦根尖Evans blue吸收量的测定 | 第77页 |
| ·小麦根尖O_2~(·-)和H_2O_2含量的测定 | 第77页 |
| ·小麦根尖抗氧化系统活性测定 | 第77页 |
| ·粗酶提取液的制备 | 第77页 |
| ·抗氧化酶活性 | 第77页 |
| ·非酶抗氧化剂含量 | 第77页 |
| ·抗氧化活性 | 第77页 |
| ·数据分析 | 第77页 |
| ·结果与分析 | 第77-85页 |
| ·不同浓度H_2O_2预处理对铝胁迫下根系伸长的影响 | 第77-78页 |
| ·H_2O_2预处理对铝胁迫下根系伸长的影响 | 第78-79页 |
| ·H_2O_2预处理对铝胁迫下根尖MDA含量的影响 | 第79-80页 |
| ·H_2O_2预处理对铝胁迫下根尖Evans blue吸收量的影响 | 第80-81页 |
| ·H_2O_2预处理对铝胁迫下根尖O_2~-和H_2O_2含量的影响 | 第81-82页 |
| ·H_2O_2预处理对铝胁迫下根尖抗氧化系统的影响 | 第82-85页 |
| ·H_2O_2预处理对抗氧化酶活性的影响 | 第82-84页 |
| ·H_2O_2预处理对非酶抗氧化剂含量的影响 | 第84-85页 |
| ·H_2O_2预处理对总抗氧化活性的影响 | 第85页 |
| ·讨论 | 第85-87页 |
| ·本章小结 | 第87-88页 |
| 第5章 铝胁迫下不同小麦基因型根尖H_2O_2的来源及其调控机理 | 第88-96页 |
| ·引言 | 第88-89页 |
| ·材料与方法 | 第89-90页 |
| ·植物材料与培养 | 第89页 |
| ·酶抑制剂和过氧化氢清除剂等处理设置 | 第89页 |
| ·小麦相对根系仲长率的测定 | 第89页 |
| ·小麦根尖MDA含量及Evans blue吸收量的测定 | 第89页 |
| ·小麦根尖H_2O_2含量的测定 | 第89页 |
| ·小麦根尖抗氧化酶活性测定 | 第89-90页 |
| ·数据分析 | 第90页 |
| ·结果与分析 | 第90-94页 |
| ·代谢抑制剂和过氧化氢清除剂对根系伸长的影响 | 第90页 |
| ·代谢抑制剂和过氧化氢清除剂等对根尖MDA含量的影响 | 第90-91页 |
| ·代谢抑制剂和过氧化氢清除剂等对根尖Evans blue吸收量的影响 | 第91-92页 |
| ·代谢抑制剂和过氧化氢清除剂等对根尖H_2O_2含量的影响 | 第92-93页 |
| ·代谢抑制剂和过氧化氢清除剂等对根尖抗氧化酶活性的影响 | 第93-94页 |
| ·讨论 | 第94-95页 |
| ·本章小结 | 第95-96页 |
| 第6章 铝对不同小麦基因型根尖NADPH氧化酶活性和H202含量的影响 | 第96-108页 |
| ·引言 | 第96-97页 |
| ·材料与方法 | 第97-98页 |
| ·植物材料与培养 | 第97页 |
| ·相对根系伸长率(RRE)的测定 | 第97页 |
| ·MDA含量的测定 | 第97页 |
| ·Evans blue吸收量的测定 | 第97页 |
| ·H_2O_2含量的测定 | 第97页 |
| ·质膜NADPH氧化酶活性的测定 | 第97-98页 |
| ·细胞质膜的分离和提取 | 第97-98页 |
| ·质膜NADPH氧化酶活性测定 | 第98页 |
| ·抗氧化酶活性测定 | 第98页 |
| ·数据分析 | 第98页 |
| ·结果与分析 | 第98-105页 |
| ·NADPH氧化酶底物和抑制剂对铝胁迫下小麦根系伸长的影响 | 第98-99页 |
| ·NADPH氧化酶底物和抑制剂对铝胁迫下根尖MDA含量的影响 | 第99-100页 |
| ·NADPH氧化酶底物和抑制剂对铝胁迫下根尖Evans blue吸收量的影响 | 第100-101页 |
| ·NADPH氧化酶底物和抑制剂对铝胁迫下根尖H_2O_2含量的影响 | 第101-102页 |
| ·铝对小麦根尖NADPH氧化酶活性的影响 | 第102-104页 |
| ·不同铝处理时间对NADPH氧化酶活性的影响 | 第102-103页 |
| ·NADPH氧化酶底物和抑制剂对铝胁迫下根尖NADPH氧化酶活性影响 | 第103-104页 |
| ·NADPH氧化酶底物和抑制剂对铝胁迫下小麦根尖抗氧化酶活性的影响 | 第104-105页 |
| ·讨论 | 第105-106页 |
| ·本章小结 | 第106-108页 |
| 第7章 小麦根尖中铝胁迫诱导的H_2O_2产生与MAPK信号转导途径的关系 | 第108-120页 |
| ·引言 | 第108-110页 |
| ·材料与方法 | 第110-111页 |
| ·植物材料与培养 | 第110页 |
| ·相对根系伸长率(RRE)的测定 | 第110页 |
| ·MDA含量的测定 | 第110页 |
| ·Evans blue吸收量的测定 | 第110页 |
| ·H_2O_2含量的测定 | 第110页 |
| ·MAPK活性的测定 | 第110-111页 |
| ·抗氧化酶活性测定 | 第111页 |
| ·数据分析 | 第111页 |
| ·结果与分析 | 第111-117页 |
| ·抑制剂处理对铝胁迫下根系仲长的影响 | 第111-112页 |
| ·抑制剂处理对铝胁迫下根尖MDA含量的影响 | 第112页 |
| ·抑制剂处理对铝胁迫下根尖Evans blue吸收量的影响 | 第112-113页 |
| ·抑制剂处理对铝胁迫下根尖H_2O_2含量的影响 | 第113-114页 |
| ·H_2O_2预处理对MAPK活性的影响 | 第114-115页 |
| ·抑制剂处理对铝胁迫下根尖MAPK活性的影响 | 第115-116页 |
| ·抑制剂处理对铝胁迫下根尖抗氧化酶活性的影响 | 第116-117页 |
| ·讨论 | 第117-119页 |
| ·本章小结 | 第119-120页 |
| 第8章 全文总结 | 第120-122页 |
| ·主要研究结论 | 第120页 |
| ·主要创新点 | 第120-121页 |
| ·研究展望 | 第121-122页 |
| 参考文献 | 第122-138页 |
| 附录 | 第138-139页 |
| 研究生期间发表的论文 | 第139页 |
