| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-9页 |
| 1 前言 | 第9-24页 |
| ·引言 | 第9页 |
| ·多不饱和脂肪酸的结构与命名 | 第9-11页 |
| ·ARA的结构 | 第10页 |
| ·EPA的结构 | 第10-11页 |
| ·多不饱和脂肪酸在生物体内的合成 | 第11-13页 |
| ·多不饱和脂肪酸的来源 | 第13-15页 |
| ·鱼油 | 第13-14页 |
| ·微藻 | 第14页 |
| ·常见产PUFA的微生物 | 第14-15页 |
| ·肝癌的药物治疗及进展 | 第15-16页 |
| ·新的化疗药物 | 第15-16页 |
| ·激素类药物 | 第16页 |
| ·生物制剂 | 第16页 |
| ·多不饱和脂肪酸的抗肿瘤作用 | 第16-20页 |
| ·影响肿瘤细胞的生物膜组成和稳定性 | 第17页 |
| ·促进肿瘤细胞的凋亡 | 第17-18页 |
| ·提高免疫细胞活性 | 第18页 |
| ·改变PUFA代谢水平 | 第18页 |
| ·增加瘤细胞内脂质过氧化作用 | 第18-19页 |
| ·抑制肿瘤细胞有丝分裂 | 第19页 |
| ·影响肿瘤细胞的基因表达 | 第19页 |
| ·抗肿瘤血管生成 | 第19-20页 |
| ·抑制肿瘤细胞与内皮细胞粘附 | 第20页 |
| ·抗肿瘤免疫机制 | 第20-23页 |
| ·肿瘤的概念 | 第20页 |
| ·抗肿瘤细胞免疫 | 第20-22页 |
| ·抗肿瘤体液免疫 | 第22页 |
| ·细胞因子 | 第22-23页 |
| ·本研究室的研究状况和进展 | 第23页 |
| ·本论文的研究意义及主要研究内容 | 第23-24页 |
| 2 材料与方法 | 第24-40页 |
| ·材料 | 第24-28页 |
| ·藻种 | 第24页 |
| ·受试动物 | 第24页 |
| ·试剂 | 第24-25页 |
| ·仪器与设备 | 第25-26页 |
| ·主要溶液 | 第26-27页 |
| ·培养基 | 第27-28页 |
| ·实验方法 | 第28-40页 |
| ·硅藻种子培养方法 | 第28页 |
| ·藻粉收集 | 第28页 |
| ·油脂抽提及脱色 | 第28页 |
| ·皂化 | 第28页 |
| ·脂肪酸酯化 | 第28-29页 |
| ·硝酸银-硅胶柱层析法分离纯化PUFA | 第29页 |
| ·气相色谱分析脂肪酸组成 | 第29页 |
| ·脾淋巴细胞相关细胞因子mRNA表达水平的检测 | 第29-33页 |
| ·MTT法检测样品对BEL-7402细胞生成的增殖作用 | 第33-36页 |
| ·动物模型的诱导、分组及给药 | 第36-39页 |
| ·统计学处理 | 第39-40页 |
| 3 结果与讨论 | 第40-57页 |
| ·PUFA对脾组织中相关细胞因子mRNA表达水平的影响 | 第40-43页 |
| ·脾组织总RNA的捉取与纯化的结果 | 第40页 |
| ·cDNA鉴定结果 | 第40-41页 |
| ·PCR扩增结果 | 第41-43页 |
| ·对EPA、AA分离提取的结果 | 第43-44页 |
| ·细胞实验结果 | 第44-49页 |
| ·不同剂量的的EPA、AA对BEL-7402细胞生长的促进及抑制作用 | 第44-45页 |
| ·不同比例的EPA、AA对BEL-7402细胞生长的促进及抑制作用 | 第45-46页 |
| ·不同比例的EPA、AA对脾淋巴细胞的增殖情况 | 第46页 |
| ·细胞形态学观察实验 | 第46-48页 |
| ·FCM检测BEL-7402细胞周期结果 | 第48-49页 |
| ·EPA对小鼠H22肝癌的免疫预防作用 | 第49-57页 |
| ·EPA对荷瘤小鼠免疫器官指数的影响 | 第49-50页 |
| ·EPA对荷瘤小鼠脾淋巴细胞增殖的影响 | 第50页 |
| ·EPA对荷瘤小鼠HC50的影响 | 第50-51页 |
| ·EPA对荷瘤小鼠单核巨噬细胞吞噬能力的影响 | 第51-52页 |
| ·H22细胞的HE染色 | 第52页 |
| ·FCM检测H22细胞周期结果 | 第52-53页 |
| ·EPA对荷瘤小鼠脾中相关细胞因子mRNA表达水平的影响 | 第53-57页 |
| 4 结论 | 第57-58页 |
| 5 展望 | 第58-59页 |
| 6 参考文献 | 第59-65页 |
| 7 攻读硕士学位期间发表论文情况 | 第65-66页 |
| 8 致谢 | 第66页 |
