| 摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 1 引言 | 第12-28页 |
| ·多糖简介 | 第12页 |
| ·乳酸菌胞外多糖 | 第12-16页 |
| ·乳酸菌胞外多糖的来源及分类 | 第13页 |
| ·乳酸菌胞外多糖的结构分析 | 第13-14页 |
| ·乳酸菌胞外多糖的理化特性 | 第14页 |
| ·乳酸菌胞外多糖的抗肿瘤活性 | 第14-15页 |
| ·乳酸菌胞外多糖的免疫调节活性 | 第15页 |
| ·乳酸菌胞外多糖的应用及前景 | 第15-16页 |
| ·肠道黏膜免疫系统的构成及黏膜免疫反应的诱导 | 第16-20页 |
| ·肠道黏膜免疫系统的构成 | 第16-18页 |
| ·黏膜免疫反应的诱导及乳酸菌的调节作用 | 第18-19页 |
| ·派氏集合淋巴结与乳酸菌多糖 | 第19-20页 |
| ·Th17细胞 | 第20-22页 |
| ·Th17细胞的发现和来源 | 第20-21页 |
| ·Th17细胞的生物学功能 | 第21页 |
| ·Th17细胞的分化调节 | 第21-22页 |
| ·Th17细胞与Th1、Th2及Treg的关系 | 第22页 |
| ·Th17细胞与各种疾病 | 第22-24页 |
| ·自身免疫性疾病 | 第22-23页 |
| ·过敏性疾病 | 第23页 |
| ·炎症性肠病 | 第23页 |
| ·肿瘤 | 第23-24页 |
| ·移植排斥反应 | 第24页 |
| ·Th17细胞的价值展望 | 第24页 |
| ·研究目的与意义 | 第24-25页 |
| ·研究目的 | 第24-25页 |
| ·研究意义 | 第25页 |
| ·研究的主要内容 | 第25-26页 |
| ·课题创新点 | 第26-28页 |
| 2 材料与方法 | 第28-39页 |
| ·材料 | 第28-30页 |
| ·原料与试剂 | 第28-29页 |
| ·实验动物 | 第29页 |
| ·实验菌种 | 第29页 |
| ·仪器与设备 | 第29-30页 |
| ·方法 | 第30-39页 |
| ·干酪乳杆菌胞外多糖的提取 | 第30-32页 |
| ·动物灌胃模型的建立及处理 | 第32页 |
| ·流式细胞术检测小鼠PP中Th17细胞数量 | 第32-34页 |
| ·ELISA分析小鼠PP结中Th17细胞因子、分化促进因子、分化抑制因子浓度的变化 | 第34-35页 |
| ·Western blot分析小鼠PP中核转录因子RORγt蛋白表达 | 第35-38页 |
| ·趋化因子CCL20浓度的分析 | 第38页 |
| ·趋化因子CCL20的mRNA表达 | 第38-39页 |
| 3 结果与分析 | 第39-56页 |
| ·派氏集合淋巴结形态观察 | 第39-40页 |
| ·EPS对小鼠PP的Th17细胞数量的影响 | 第40-41页 |
| ·EPS对小鼠PP中Th17细胞分化标志性因子IL-17、IL-21、IL-22蛋白浓度的影响 | 第41-45页 |
| ·EPS对小鼠PP中Th17细胞分化过程中重要细胞因子和主要抑制因子的影响 | 第45-54页 |
| ·EPS对小鼠PP中Th17细胞分化促进因子TGF-β、IL-23、IL-6蛋白分泌量的影响 | 第45-49页 |
| ·EPS对小鼠PP中Th17细胞分化特异性转录因子RORγt蛋白表达的影响 | 第49-50页 |
| ·EPS对小鼠PP中Th17细胞分化抑制因子IFN-γ、IL-4、IL-2蛋白分泌量的影响 | 第50-54页 |
| ·EPS对小鼠的Th17细胞向PP中迁移的必要条件的影响 | 第54-56页 |
| ·EPS对小鼠PP趋化因子CCL20蛋白表达的影响 | 第54-55页 |
| ·EPS对小鼠PP趋化因子CCL20的mRNA表达的影响 | 第55-56页 |
| 4 讨论 | 第56-61页 |
| ·Th17细胞标志性细胞因子和转录因子 | 第56-57页 |
| ·Th17细胞与Th1细胞、Th2细胞、调节性T细胞的关系 | 第57-59页 |
| ·Th17细胞的迁移 | 第59页 |
| ·Th17细胞与炎症性应答 | 第59-60页 |
| ·Th17细胞与肠黏膜免疫 | 第60-61页 |
| 5 结论 | 第61-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-69页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第69页 |
