| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第一章 引言 | 第9-21页 |
| 1.1 有害藻华（harmful algal bloom, HABs） | 第9页 |
| 1.2 腹泻性贝毒 | 第9-12页 |
| 1.2.1 腹泻性贝毒的发现 | 第9页 |
| 1.2.2 腹泻性贝毒的来源 | 第9-10页 |
| 1.2.3 腹泻性贝毒的结构、化学性质及致毒机理 | 第10-11页 |
| 1.2.4 贝类对DSP毒素的响应与抗性机制 | 第11-12页 |
| 1.3 外源化合物在贝体中的代谢解毒 | 第12-13页 |
| 1.4 双壳贝类谷胱甘肽-S-转移酶及其在外源化合物解毒中的作用 | 第13-18页 |
| 1.4.1 GST的分类 | 第13-14页 |
| 1.4.2 GST结构 | 第14-15页 |
| 1.4.3 GST的功能 | 第15-17页 |
| 1.4.4 GST在贝体外源化合物代谢解毒过程中的研究现状 | 第17-18页 |
| 1.5 谷胱甘肽-S-转移酶抑制剂 | 第18-20页 |
| 1.6 本文的目的和意义 | 第20页 |
| 1.7 本文的创新之处 | 第20-21页 |
| 第二章 利玛原甲藻作用下近江牡蛎不同亚型GST表达模式 | 第21-51页 |
| 2.1 实验材料 | 第21-23页 |
| 2.1.1 近江牡蛎 | 第21页 |
| 2.1.2 藻种 | 第21-22页 |
| 2.1.3 质粒与菌种 | 第22页 |
| 2.1.4 培养基 | 第22-23页 |
| 2.2 实验设计 | 第23页 |
| 2.3 实验方法 | 第23-33页 |
| 2.3.1 总RNA的提取 | 第23-24页 |
| 2.3.2 逆转录 | 第24页 |
| 2.3.3 八种亚型GST基因核心序列的获取 | 第24-28页 |
| 2.3.4 实时荧光定量PCR | 第28-30页 |
| 2.3.5 毒素的提取与测定 | 第30-31页 |
| 2.3.6 GST酶活的测定 | 第31-32页 |
| 2.3.7 GST蛋白水平 | 第32-33页 |
| 2.3.8 数据统计方法 | 第33页 |
| 2.4 实验结果 | 第33-47页 |
| 2.4.1 总RNA的完整性 | 第33-34页 |
| 2.4.2 近江牡蛎八种亚型GST基因c DNA的克隆和序列分析 | 第34-35页 |
| 2.4.3 鳃和消化腺中OA的含量 | 第35-37页 |
| 2.4.4 染毒后近江牡蛎鳃和消化腺中不同亚型GST mRNA表达水平的变化 | 第37-43页 |
| 2.4.5 染毒后近江牡蛎不同亚型GST蛋白含量的变化 | 第43-47页 |
| 2.4.6 GST活性的变化 | 第47页 |
| 2.5 结果讨论 | 第47-50页 |
| 2.6 小结 | 第50-51页 |
| 第三章 谷胱甘肽-S-转移酶在近江牡蛎耐受腹泻性贝毒中的作用研究 | 第51-65页 |
| 3.1 实验设计 | 第51-52页 |
| 3.2 实验方法 | 第52-54页 |
| 3.2.1 DSP毒素的检测 | 第52页 |
| 3.2.2 MRP和P-gp外排活性的测定 | 第52-53页 |
| 3.2.3 抗氧化酶活性的测定 | 第53-54页 |
| 3.2.4 丙二醛（malondialdehyde，MDA）含量测定 | 第54页 |
| 3.2.5 数据分析 | 第54页 |
| 3.3 实验结果 | 第54-62页 |
| 3.3.1 依他尼酸对GST的抑制作用 | 第54-55页 |
| 3.3.2 OA积累情况 | 第55-57页 |
| 3.3.3 P-gp和MRP的外排活性 | 第57-58页 |
| 3.3.4 MDA含量和抗氧化酶的活性 | 第58-62页 |
| 3.4 结果讨论 | 第62-64页 |
| 3.5 小结 | 第64-65页 |
| 第四章 结论与展望 | 第65-67页 |
| 4.1 结论 | 第65-66页 |
| 4.2 展望 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-77页 |
| 附录 | 第77-80页 |
| 在校期间发表学术论文 | 第80-81页 |
| 致谢 | 第81页 |
