| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-27页 |
| 1.1 百合组织培养研究进展 | 第14-19页 |
| 1.1.1 百合的再生途径 | 第14-15页 |
| 1.1.2 百合器官发生途径再生体系的研究进展 | 第15-17页 |
| 1.1.3 百合体细胞胚发生途径再生体系的研究进展 | 第17-18页 |
| 1.1.4 百合离体再生植株的遗传稳定性鉴定 | 第18-19页 |
| 1.2 植物超低温保存的研究概况 | 第19-23页 |
| 1.2.1 超低温保存的主要方法 | 第20页 |
| 1.2.2 基于玻璃化的超低温保存方法 | 第20-22页 |
| 1.2.3 超低温保存后再生植株遗传稳定性鉴定 | 第22-23页 |
| 1.3 百合超低温保存研究进展 | 第23-25页 |
| 1.3.1 百合茎尖超低温保存 | 第23-24页 |
| 1.3.2 百合胚性愈伤组织超低温保存 | 第24-25页 |
| 1.4 本研究的目的和意义 | 第25-26页 |
| 1.5 本研究的技术路线 | 第26-27页 |
| 第二章 百合叶片不定芽再生体系的建立 | 第27-47页 |
| 2.1 材料和试剂 | 第27-28页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第27页 |
| 2.1.2 主要药品及试剂 | 第27页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第27-28页 |
| 2.2 试验方法 | 第28-33页 |
| 2.2.1 试管材料的建立 | 第28页 |
| 2.2.2 百合叶片不定芽的诱导 | 第28-29页 |
| 2.2.3 叶片不定芽诱导的组织学观察 | 第29页 |
| 2.2.4 叶片不定芽再生植株的遗传稳定性鉴定 | 第29-33页 |
| 2.2.5 试验设计与数据分析 | 第33页 |
| 2.3 结果与分析 | 第33-44页 |
| 2.3.1 影响叶片不定芽分化的因素 | 第35-39页 |
| 2.3.2 组织学观察 | 第39-40页 |
| 2.3.3 叶片不定芽再生植株遗传稳定性鉴定 | 第40-44页 |
| 2.4 讨论 | 第44-46页 |
| 2.5 小结 | 第46-47页 |
| 第三章 百合鳞茎薄层体细胞胚再生体系的建立 | 第47-61页 |
| 3.1 材料和试剂 | 第47-48页 |
| 3.1.1 植物材料 | 第47页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第47-48页 |
| 3.1.3 主要仪器 | 第48页 |
| 3.2 试验方法 | 第48-49页 |
| 3.2.1 试管材料的建立 | 第48页 |
| 3.2.2 鳞茎薄层组织的切取以及胚性愈伤组织的诱导 | 第48页 |
| 3.2.3 胚性愈伤组织的增殖 | 第48-49页 |
| 3.2.4 体细胞胚植株再生 | 第49页 |
| 3.2.5 应用于其他多个百合品种 | 第49页 |
| 3.2.6 鳞茎薄层胚性愈伤组织诱导的组织学观察 | 第49页 |
| 3.2.7 体细胞胚再生植株的遗传稳定性鉴定 | 第49页 |
| 3.2.8 试验设计与数据分析 | 第49页 |
| 3.3 结果与分析 | 第49-58页 |
| 3.3.1 NAA 和 KT 对于胚性愈伤诱导的影响 | 第51-52页 |
| 3.3.2 不同激素的诱导培养基形成胚性愈伤组织的比较 | 第52-53页 |
| 3.3.3 TDZ 浓度对胚性愈伤组织继代的影响 | 第53-54页 |
| 3.3.4 其他 4 个百合品种上的应用 | 第54-55页 |
| 3.3.5 鳞茎薄层诱导胚性愈伤组织的组织学观察 | 第55-57页 |
| 3.3.6 体细胞胚再生植株遗传稳定性的 ISSR 鉴定 | 第57-58页 |
| 3.4 讨论 | 第58-60页 |
| 3.5 小结 | 第60-61页 |
| 第四章 百合茎尖超低温保存体系的建立 | 第61-76页 |
| 4.1 材料和试剂 | 第61-62页 |
| 4.1.1 植物材料 | 第61-62页 |
| 4.1.2 主要药品及试剂 | 第62页 |
| 4.1.3 主要仪器 | 第62页 |
| 4.2 试验方法 | 第62-64页 |
| 4.2.1 小滴玻璃化法茎尖超低温保存体系的建立 | 第62-64页 |
| 4.2.2 超低温保存后成活细胞的定位 | 第64页 |
| 4.2.3 超低温保存后再生植株的遗传稳定性鉴定 | 第64页 |
| 4.2.4 试验设计与数据分析 | 第64页 |
| 4.3 结果与分析 | 第64-73页 |
| 4.3.1 预培养的效果 | 第65-67页 |
| 4.3.2 加载液的效果 | 第67-69页 |
| 4.3.3 PVS2 处理时间的效果 | 第69-70页 |
| 4.3.4 其他百合品种上的应用 | 第70页 |
| 4.3.5 冷冻茎尖的成活细胞定位 | 第70-72页 |
| 4.3.6 再生植株遗传稳定性的 ISSR 鉴定 | 第72-73页 |
| 4.4 讨论 | 第73-75页 |
| 4.5 小结 | 第75-76页 |
| 第五章 百合茎尖超低温保存后体细胞胚再生与茎再生研究 | 第76-87页 |
| 5.1 材料和试剂 | 第76-77页 |
| 5.1.1 植物材料 | 第76页 |
| 5.1.2 主要试剂 | 第76页 |
| 5.1.3 主要仪器 | 第76-77页 |
| 5.2 试验方法 | 第77-78页 |
| 5.2.1 百合茎尖的小滴玻璃化法超低温保存体系 | 第77页 |
| 5.2.2 超低温保存后茎的直接再生途径 | 第77页 |
| 5.2.3 超低温保存后的体细胞胚再生途径 | 第77-78页 |
| 5.2.4 驯化和移栽 | 第78页 |
| 5.2.5 试验设计与数据分析 | 第78页 |
| 5.3 结果与分析 | 第78-85页 |
| 5.3.1 茎尖大小对胚性愈伤组织诱导的影响 | 第81-82页 |
| 5.3.2 不同浓度的 KT 对胚性愈伤组织诱导的影响 | 第82页 |
| 5.3.3 不同浓度的 TDZ 对胚性愈伤组织增殖的影响 | 第82-83页 |
| 5.3.4 其他百合品种上的应用 | 第83-85页 |
| 5.4 讨论 | 第85-86页 |
| 5.5 小结 | 第86-87页 |
| 第六章 百合胚性愈伤组织超低温保存的初步研究 | 第87-97页 |
| 6.1 材料和试剂 | 第87-88页 |
| 6.1.1 植物材料 | 第87页 |
| 6.1.2 主要药品及试剂 | 第87-88页 |
| 6.1.3 主要仪器 | 第88页 |
| 6.2 试验方法 | 第88-89页 |
| 6.2.1 预试验 | 第88页 |
| 6.2.2 西伯利亚百合胚性愈伤组织的玻璃化法超低温保存 | 第88-89页 |
| 6.2.3 成活胚性愈伤组织的增殖 | 第89页 |
| 6.2.4 植株再生 | 第89页 |
| 6.2.5 试验设计与数据分析 | 第89页 |
| 6.3 结果与分析 | 第89-95页 |
| 6.3.1 预培养时间对胚性愈伤组织成活的影响 | 第94页 |
| 6.3.2 PVS2 处理时间对胚性愈伤组织成活的影响 | 第94-95页 |
| 6.4 讨论 | 第95-96页 |
| 6.5 小结 | 第96-97页 |
| 第七章 结论与创新点 | 第97-98页 |
| 7.1 全文结论 | 第97页 |
| 7.2 全文创新点 | 第97-98页 |
| 参考文献 | 第98-113页 |
| 附录 缩略词 | 第113-115页 |
| 致谢 | 第115-116页 |
| 作者简介 | 第116-117页 |
