| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 英文缩略词表 | 第12-14页 |
| 第1章 文献综述 | 第14-22页 |
| 1.1 植物多糖研究概述 | 第14-17页 |
| 1.1.1 植物多糖的提取 | 第14-15页 |
| 1.1.2 植物多糖的分离纯化 | 第15页 |
| 1.1.3 植物多糖的结构表征 | 第15-16页 |
| 1.1.4 植物多糖的生物活性 | 第16-17页 |
| 1.2 唐古特白刺多糖的研究进展 | 第17-18页 |
| 1.2.1 唐古特白刺概述 | 第17页 |
| 1.2.2 唐古特白刺多糖的提取、分离纯化及结构表征 | 第17-18页 |
| 1.2.3 唐古特白刺多糖的生物活性 | 第18页 |
| 1.3 植物多糖的化学修饰 | 第18-19页 |
| 1.3.1 硫酸化修饰 | 第18-19页 |
| 1.3.2 乙酰化修饰 | 第19页 |
| 1.3.3 羧甲基化修饰 | 第19页 |
| 1.4 化学修饰对多糖生物活性的影响 | 第19-20页 |
| 1.4.1 硫酸化修饰对植物多糖生物活性的影响 | 第19-20页 |
| 1.4.2 乙酰化修饰对植物多糖生物活性的影响 | 第20页 |
| 1.4.3 羧甲基化修饰对植物多糖生物活性的影响 | 第20页 |
| 1.5 课题研究思路与方法 | 第20-21页 |
| 1.6 课题研究目的与意义 | 第21-22页 |
| 第2章 唐古特白刺多糖提取工艺优化 | 第22-36页 |
| 2.1 实验材料 | 第22-23页 |
| 2.1.1 材料 | 第22页 |
| 2.1.2 试剂与药品 | 第22页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第22-23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-24页 |
| 2.2.1 唐古特白刺多糖的提取 | 第23页 |
| 2.2.2 唐古特白刺多糖的含量测定 | 第23页 |
| 2.2.3 单因素实验 | 第23-24页 |
| 2.2.4 响应面法优化热水浸提唐古特白刺多糖实验设计 | 第24页 |
| 2.2.5 响应面法优化酶辅助提取唐古特白刺多糖实验设计 | 第24页 |
| 2.2.6 统计学方法 | 第24页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第24-35页 |
| 2.3.1 测定唐古特白刺多糖含量方法学考察 | 第24-27页 |
| 2.3.2 热水浸提法单因素实验结果 | 第27-28页 |
| 2.3.3 酶辅助提取法单因素实验结果 | 第28-29页 |
| 2.3.4 响应面法优化热水浸提唐古特白刺多糖工艺 | 第29-32页 |
| 2.3.5 响应面法优化酶辅助提取唐古特白刺多糖工艺 | 第32-35页 |
| 2.4 本章小结 | 第35-36页 |
| 第3章 唐古特白刺多糖的脱色脱蛋白工艺优化 | 第36-44页 |
| 3.1 实验材料 | 第36-37页 |
| 3.1.1 材料 | 第36页 |
| 3.1.2 试剂与药品 | 第36页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第36-37页 |
| 3.2 实验方法 | 第37-39页 |
| 3.2.1 大孔树脂预处理 | 第37页 |
| 3.2.2 唐古特白刺果实粗多糖的制备 | 第37页 |
| 3.2.3 大孔树脂静态吸附实验 | 第37-38页 |
| 3.2.4 大孔树脂动态吸附实验 | 第38页 |
| 3.2.5 分析方法 | 第38页 |
| 3.2.6 统计学方法 | 第38-39页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第39-42页 |
| 3.3.1 大孔树脂的筛选结果 | 第39页 |
| 3.3.2 pH对大孔树脂脱色、脱蛋白和多糖回收率的影响 | 第39-40页 |
| 3.3.3 流速对大孔树脂脱色和脱蛋白的影响 | 第40-41页 |
| 3.3.4 上样浓度对大孔树脂脱色和脱蛋白的影响 | 第41页 |
| 3.3.5 脱色工艺的验证 | 第41-42页 |
| 3.4 本章小结 | 第42-44页 |
| 第4章 唐古特白刺多糖的羧甲基化及其化学表征 | 第44-56页 |
| 4.1 实验材料 | 第44-45页 |
| 4.1.1 材料 | 第44页 |
| 4.1.2 试剂与药品 | 第44-45页 |
| 4.1.3 实验仪器 | 第45页 |
| 4.2 实验方法 | 第45-47页 |
| 4.2.1 唐古特白刺多糖的制备 | 第45页 |
| 4.2.2 羧甲基化修饰唐古特白刺多糖的制备 | 第45页 |
| 4.2.3 取代度的测定 | 第45-46页 |
| 4.2.4 基本理化性质分析 | 第46页 |
| 4.2.5 单糖组成分析 | 第46页 |
| 4.2.6 分子量的测定 | 第46-47页 |
| 4.2.7 红外光谱 | 第47页 |
| 4.2.8 刚果红实验 | 第47页 |
| 4.2.9 统计学方法 | 第47页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第47-54页 |
| 4.3.1 取代度及基本理化性质分析 | 第47-49页 |
| 4.3.2 单糖组成分析 | 第49-51页 |
| 4.3.3 分子量的测定 | 第51-52页 |
| 4.3.4 红外光谱 | 第52-53页 |
| 4.3.5 刚果红实验 | 第53-54页 |
| 4.4 本章小结 | 第54-56页 |
| 第5章 唐古特白刺多糖体外抗氧化活性和免疫活性研究 | 第56-66页 |
| 5.1 实验材料 | 第56-57页 |
| 5.1.1 材料与实验动物 | 第56-57页 |
| 5.1.2 实验试剂与药品 | 第57页 |
| 5.1.3 实验仪器 | 第57页 |
| 5.2 实验方法 | 第57-59页 |
| 5.2.1 体外抗氧化活性的测定 | 第57-58页 |
| 5.2.2 动物分组及实验设计 | 第58页 |
| 5.2.3 小鼠的解剖及样品处理方法 | 第58-59页 |
| 5.2.4 小鼠胸腺、脾脏指数的测定 | 第59页 |
| 5.2.5 小鼠血清中IFN-γ和IL-4含量的测定 | 第59页 |
| 5.2.6 小鼠小肠绒毛长度和隐窝深度的测定 | 第59页 |
| 5.2.7 小鼠小肠内容物中SIgA含量的测定 | 第59页 |
| 5.2.8 统计学方法 | 第59页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第59-65页 |
| 5.3.1 白刺多糖体外抗氧化活性 | 第59-61页 |
| 5.3.2 NTP和CMNTP对免疫抑制小鼠胸腺、脾脏指数的影响 | 第61-62页 |
| 5.3.3 NTP和CMNTP对免疫抑制小鼠血清中IFN-γ和IL-4含量的影响 | 第62-63页 |
| 5.3.4 NTP和CMNTP对免疫抑制小鼠小肠绒毛长度和隐窝深度的影响 | 第63-64页 |
| 5.3.5 NTP和CMNTP对免疫抑制小鼠小肠肠液中SIgA含量 | 第64-65页 |
| 5.4 本章小结 | 第65-66页 |
| 第6章 结论 | 第66-68页 |
| 参考文献 | 第68-80页 |
| 致谢 | 第80-82页 |
| 攻读学位期间科研成果 | 第82页 |
