| 致谢 | 第4-5页 |
| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6页 |
| 1 绪论 | 第11-29页 |
| 1.1 壳聚糖的性质及其衍生物 | 第11-16页 |
| 1.1.1 壳聚糖的物理化学性质 | 第11-12页 |
| 1.1.2 壳聚糖用作吸收增强剂 | 第12-13页 |
| 1.1.3 壳聚糖在药物控释领域中所存在的问题 | 第13-14页 |
| 1.1.4 壳聚糖的主要衍生物 | 第14-16页 |
| 1.2 PEG化壳聚糖的合成方法及应用 | 第16-25页 |
| 1.2.1 PEG化壳聚糖的合成方法 | 第16-19页 |
| 1.2.2 PEG化壳聚糖的应用 | 第19-25页 |
| 1.2.2.1 PEG化壳聚糖在药物传递领域的应用 | 第19-22页 |
| 1.2.2.2 PEG化壳聚糖在紧密连接调整领域的应用 | 第22页 |
| 1.2.2.3 PEG化壳聚糖在寡核苷酸传递领域的应用 | 第22-25页 |
| 1.3 单电子转移自由基聚合(SET-LRP) | 第25-27页 |
| 1.3.1 活性自由基聚合 | 第25-26页 |
| 1.3.2 单电子转移自由基聚合(SET-LRP)的机理 | 第26-27页 |
| 1.4 课题的提出 | 第27-29页 |
| 2 壳聚糖基大分子引发剂引发OEGMA的SET-LRP动力学研究 | 第29-39页 |
| 2.1 引言 | 第29页 |
| 2.2 实验部分 | 第29-32页 |
| 2.2.1 试剂与仪器 | 第29-30页 |
| 2.2.2 壳聚糖-SDS复合物(SCC)的制备 | 第30页 |
| 2.2.3 溴取代壳聚糖-SDS复合物(SCC-Br)的制备 | 第30页 |
| 2.2.4 SDS从SCC-Br上脱除 | 第30-31页 |
| 2.2.5 SET-LRP合成CS-POEGMA | 第31-32页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第32-38页 |
| 2.3.1 SCC、SCC-Br、CS-Br的合成与表征 | 第32-34页 |
| 2.3.2 SET-LRP过程中OEGMA转化率的表征 | 第34-35页 |
| 2.3.3 缓冲溶液pH对聚合反应动力学的影响 | 第35-36页 |
| 2.3.4 溴代异丁酸取代度(Ds)对聚合反应动力学的影响 | 第36-37页 |
| 2.3.5 CS-Br浓度对聚合反应动力学的影响 | 第37-38页 |
| 2.4 本章小结 | 第38-39页 |
| 3 CS-POEGMA衍生物负载DOX及载药胶束细胞毒性研究 | 第39-53页 |
| 3.1 引言 | 第39页 |
| 3.2 实验部分 | 第39-44页 |
| 3.2.1 试剂与仪器 | 第39-40页 |
| 3.2.2 壳聚糖基接枝共聚物CS-POEGMA的制备 | 第40页 |
| 3.2.3 壳聚糖基接枝共聚物衍生物的制备 | 第40-41页 |
| 3.2.4 CS-POEGMA-CTA胶束释药行为的研究 | 第41-43页 |
| 3.2.4.1 CS-POEGMA-CTA胶束对模型药物Dox的包载 | 第41-42页 |
| 3.2.4.2 不同pH条件下CS-POEGMA-CTA胶束Dox释药曲线的研究 | 第42-43页 |
| 3.2.5 CS-POEGMA-SAA胶束释药行为的研究 | 第43页 |
| 3.2.5.1 CS-POEGMA-SAA胶束对模型药物Dox的包载 | 第43页 |
| 3.2.5.2 不同pH条件下CS-POEGMA-SAA胶束Dox释药曲线的研究 | 第43页 |
| 3.2.6 CS-POEGMA-CTA-Dox胶束细胞毒性研究 | 第43-44页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第44-50页 |
| 3.3.1 壳聚糖基接枝共聚物衍生物的表征 | 第44-45页 |
| 3.3.2 CS-POEGMA-CTA胶束的释药行为及载药机理研究 | 第45-50页 |
| 3.3.3 CS-POEGMA-CTA-Dox载药胶束细胞毒性的研究 | 第50页 |
| 3.4 本章小结 | 第50-53页 |
| 4 结论 | 第53-55页 |
| 参考文献 | 第55-69页 |
| 硕士期间发表论文 | 第69页 |
