| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-22页 |
| 第一节 PRDMs的研究进展 | 第11-17页 |
| 1.1 PRDMs简介 | 第11-12页 |
| 1.2 PRDMs功能的研究 | 第12-17页 |
| 第二节 Prdm14基因的结构与功能 | 第17-18页 |
| 第三节 Prdm1基因的结构与功能 | 第18-20页 |
| 第四节 本研究的意义 | 第20-22页 |
| 第二章 牙鲆prdm14基因的克隆与表达分析 | 第22-57页 |
| 第一节 实验材料与方法 | 第22-37页 |
| 1.1 实验材料 | 第22-25页 |
| 1.2 基因组DNA以及总RNA的提取 | 第25页 |
| 1.3 反转录合成牙鲆cDNA第一链 | 第25页 |
| 1.4 合成3’-,5’-RACE-Ready cDNA第一链 | 第25页 |
| 1.5 牙鲆prdm14 cDNA核心片段的获得 | 第25-26页 |
| 1.6 牙鲆prdm14基因3’.和5’-区域的获得 | 第26-27页 |
| 1.7 牙鲆prdm14全长cDNA以及DNA的获得 | 第27页 |
| 1.8 牙鲆prdm14基因启动子序列的获得 | 第27-28页 |
| 1.9 牙鲆prdm14基因的实时荧光定量(qRT-PCR)分析 | 第28页 |
| 1.10 牙鲆prdm14基因的ISH分析 | 第28-29页 |
| 1.11 牙鲆prdm14绿色荧光蛋白报告载体的构建 | 第29-35页 |
| 1.12 数据分析 | 第35-37页 |
| 第二节 结果 | 第37-51页 |
| 2.1 牙鲆prdm14基因的分子特征 | 第37-41页 |
| 2.2 牙鲆prdm14基因的染色体共线性分析 | 第41页 |
| 2.3 牙鲆prdm14基因启动子序列的克隆与分析 | 第41-44页 |
| 2.4 不同发育时期牙鲆prdm14基因的qRT-PCR分析 | 第44-45页 |
| 2.5 不同发育时期牙鲆prdm14基因的ISH分析 | 第45页 |
| 2.6 成体组织中牙鲆prdm14基因的ISH分析 | 第45-46页 |
| 2.7 牙鲆prdm14基因相关GFP报告载体的构建 | 第46-51页 |
| 第三节 讨论 | 第51-57页 |
| 第三章 牙鲆prdm1基因的克隆与表达分析 | 第57-74页 |
| 第一节 材料和方法 | 第57-62页 |
| 1.1 实验材料 | 第57-58页 |
| 1.2 牙鲆基因组DNA以及总RNA的提取 | 第58页 |
| 1.3 牙鲆RNA的反转录 | 第58页 |
| 1.4 牙鲆prdm1基因cDNA核心片段的获得 | 第58-59页 |
| 1.5 牙鲆prdm1基因3’-和5’-区域的获得 | 第59页 |
| 1.6 牙鲆prdm1基因cDNA全长的获得 | 第59-60页 |
| 1.7 牙鲆prdm1基因启动子序列的获得 | 第60页 |
| 1.8 牙鲆prdm1基因的qRT-PCR分析 | 第60-61页 |
| 1.9 牙鲆prdm1基因的ISH分析 | 第61页 |
| 1.10 数据分析 | 第61-62页 |
| 第二节 结果 | 第62-71页 |
| 2.1 牙鲆prdm1基因的分子特征 | 第62-65页 |
| 2.2 牙鲆prdm1基因启动子区的克隆与分析 | 第65-68页 |
| 2.3 牙鲆prdm1基因在胚胎发育时期的qRT-PCR分析 | 第68页 |
| 2.4 牙鲆prdm1基因在成鱼组织中的qRT-PCR分析 | 第68-69页 |
| 2.5 不同发育时期牙鲆prdm1基因的ISH分析 | 第69页 |
| 2.6 牙鲆prdm1基因在成体组织中的ISH分析 | 第69-71页 |
| 第三节 讨论 | 第71-74页 |
| 参考文献 | 第74-81页 |
| 附录 | 第81-83页 |
| 致谢 | 第83-84页 |
| 个人简历 | 第84页 |
