| 摘要 | 第3-6页 |
| abstract | 第6-9页 |
| 第1章 绪论 | 第13-35页 |
| 1.1 手性药物与农药 | 第13-17页 |
| 1.1.1 手性分子及表示方法 | 第13页 |
| 1.1.2 手性化合物的用途与发展趋势 | 第13-15页 |
| 1.1.3 手性对映体药效的差异性 | 第15-17页 |
| 1.2 手性化合物分析方法 | 第17-32页 |
| 1.2.1 化学拆分法 | 第17页 |
| 1.2.2 组合拆分法和包合拆分法 | 第17-18页 |
| 1.2.3 动力学拆分法 | 第18页 |
| 1.2.4 生物拆分法 | 第18页 |
| 1.2.5 色谱法 | 第18-32页 |
| 1.3 展望 | 第32-33页 |
| 1.4 本论文选题意义及重要内容 | 第33-35页 |
| 1.4.1 选题意义 | 第33页 |
| 1.4.2 本论文主要研究内容 | 第33-35页 |
| 第2章 全衍生化 β-环糊精固定相测定柚皮甙对映体 | 第35-47页 |
| 2.1 引言 | 第35-36页 |
| 2.2 实验部分 | 第36-39页 |
| 2.2.1 仪器与试剂 | 第36-37页 |
| 2.2.2 衍生化 β-环糊精键合相的制备 | 第37-38页 |
| 2.2.3 色谱柱的填装 | 第38页 |
| 2.2.4 标准溶液的配制 | 第38页 |
| 2.2.5 色谱方法 | 第38-39页 |
| 2.2.6 标准曲线的制作 | 第39页 |
| 2.2.7 样品前处理方法 | 第39页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第39-46页 |
| 2.3.1 固定相的红外光谱基本表征 | 第39-40页 |
| 2.3.2 色谱条件的优化 | 第40-43页 |
| 2.3.3 柚皮甙对映体含量的测定结果色谱条件的优化 | 第43-46页 |
| 2.4 结论 | 第46-47页 |
| 第3章 脲基衍生化 β-环糊精键合相拆分和测定苹果中已唑醇对映体 | 第47-58页 |
| 3.1 引言 | 第47-49页 |
| 3.2 实验部分 | 第49-51页 |
| 3.2.1 仪器与试剂 | 第49页 |
| 3.2.2 脲基 β-环糊精键合相的制备 | 第49-50页 |
| 3.2.3 色谱柱的填装 | 第50页 |
| 3.2.4 标准溶液的配制 | 第50-51页 |
| 3.2.5 样品预处理 | 第51页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第51-57页 |
| 3.3.1 固定相的元素分析和红外光谱基本表征 | 第51-52页 |
| 3.3.2 色谱条件的优化 | 第52-55页 |
| 3.3.3 己唑醇的含量测定 | 第55-57页 |
| 3.4 结论 | 第57-58页 |
| 第4章 毛细管电色谱法测定药片中尼卡地平对映体含量 | 第58-70页 |
| 4.1 引言 | 第58-59页 |
| 4.2 实验部分 | 第59-61页 |
| 4.2.1 仪器与试剂 | 第59-60页 |
| 4.2.2 毛细管的预处理 | 第60页 |
| 4.2.3 β-环糊精修饰的毛细管电色谱柱的制备 | 第60-61页 |
| 4.2.4 标准溶液的配制 | 第61页 |
| 4.2.5 电色谱条件 | 第61页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第61-69页 |
| 4.3.1 红外光谱结构表征 | 第61-62页 |
| 4.3.2 分离条件的优化 | 第62-66页 |
| 4.3.3 尼卡地平含量测定 | 第66-69页 |
| 4.4 结论 | 第69-70页 |
| 第5章 毛细管电色谱法测定果蔬中粉唑醇对映体的含量 | 第70-85页 |
| 5.1 引言 | 第70-71页 |
| 5.2 实验部分 | 第71-73页 |
| 5.2.1 仪器与试剂 | 第71-72页 |
| 5.2.2 毛细管电色谱柱的制备与表征 | 第72页 |
| 5.2.3 缓冲溶液和标准溶液的配制 | 第72-73页 |
| 5.2.4 样品的前处理 | 第73页 |
| 5.2.5 毛细管电色谱测定方法 | 第73页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第73-84页 |
| 5.3.1 毛细管电色谱柱制备与表征 | 第73-74页 |
| 5.3.2 电渗流的考察 | 第74-75页 |
| 5.3.3 分离条件的优化 | 第75-78页 |
| 5.3.4 样品的前处理 | 第78-79页 |
| 5.3.5 样品中对映体含量的测定 | 第79-84页 |
| 5.4 结论 | 第84-85页 |
| 致谢 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-95页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第95页 |
