| 摘要 | 第6-8页 |
| abstract | 第8-9页 |
| 英文缩略表 | 第16-17页 |
| 第一章 引言 | 第17-38页 |
| 1.1 转基因作物商业化应用现状 | 第17-23页 |
| 1.1.1 全球转基因作物的商业化应用现状 | 第17-20页 |
| 1.1.2 我国转基因作物的商业化应用 | 第20页 |
| 1.1.3 复合性状转基因作物的商业化应用 | 第20-23页 |
| 1.2 国际上对复合性状转基因作物的安全监管 | 第23-25页 |
| 1.2.1 美国/加拿大模式 | 第23-24页 |
| 1.2.2 澳大利亚/新西兰模式 | 第24页 |
| 1.2.3 日本/韩国模式 | 第24页 |
| 1.2.4 阿根廷/菲律宾模式 | 第24-25页 |
| 1.2.5 欧盟模式 | 第25页 |
| 1.3 育种复合转基因作物的安全性考虑 | 第25-31页 |
| 1.3.1 育种复合转基因作物的遗传稳定性 | 第25-29页 |
| 1.3.2 育种复合引起的基因互作 | 第29-31页 |
| 1.4 组学在转基因安全检测方面的应用 | 第31-38页 |
| 1.4.1 转录组学 | 第31-33页 |
| 1.4.2 蛋白质学 | 第33-35页 |
| 1.4.3 代谢组学 | 第35-37页 |
| 1.4.4 本课题研究的目的意义 | 第37-38页 |
| 第二章 复合性状转基因作物的获得及遗传稳定性分析 | 第38-60页 |
| 2.1 材料和方法 | 第38-40页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第38页 |
| 2.1.2 实验试剂与仪器 | 第38-39页 |
| 2.1.3 引物及探针合成及测序 | 第39-40页 |
| 2.1.4 供试昆虫与除草剂 | 第40页 |
| 2.2 试验方法 | 第40-46页 |
| 2.2.1 抗虫耐除草剂复合性状转基因作物SW-1 的获得 | 第40页 |
| 2.2.2 植物基因组DNA提取 | 第40-41页 |
| 2.2.3 复合性状转基因玉米的多重PCR建立 | 第41-42页 |
| 2.2.4 转化体特异性PCR | 第42页 |
| 2.2.5 数字PCR检测目标基因的拷贝数 | 第42-43页 |
| 2.2.6 转基因玉米RT-PCR检测 | 第43-44页 |
| 2.2.7 qPCR表达量分析 | 第44页 |
| 2.2.8 免疫试纸条检测 | 第44-45页 |
| 2.2.9 Cry1Ab蛋白表达量的测定 | 第45-46页 |
| 2.2.10 草甘膦耐受性试验 | 第46页 |
| 2.2.11 室内生测法分析转基因玉米的抗虫性 | 第46页 |
| 2.3 结果分析 | 第46-58页 |
| 2.3.1 复合性状转基因玉米的多重PCR检测 | 第46-50页 |
| 2.3.2 杂交玉米SW中目标基因的整合位点分析 | 第50-52页 |
| 2.3.3 杂交复合转基因玉米SW中目标基因的转录水平表达分析 | 第52-54页 |
| 2.3.4 杂交复合转基因玉米SW中外源基因表达分析 | 第54-55页 |
| 2.3.5 数字PCR方法检测复合性状转基因玉米SW-1 的拷贝数 | 第55-57页 |
| 2.3.6 杂交复合转基因玉米SW的目标性状分析 | 第57-58页 |
| 2.4 讨论 | 第58-60页 |
| 第三章 组学分析育种复合对基因组稳定性的影响 | 第60-78页 |
| 3.1 实验材料 | 第60-63页 |
| 3.1.1 植物材料 | 第60页 |
| 3.1.2 实验仪器及试剂 | 第60页 |
| 3.1.3 转录组学实验方法 | 第60-63页 |
| 3.1.4 代谢组学分析方法 | 第63页 |
| 3.2 结果与分析 | 第63-76页 |
| 3.2.1 转录组分析育种复合对基因组稳定性的影响 | 第63-72页 |
| 3.2.2 代谢组分析育种复合对基因组稳定性的影响 | 第72-76页 |
| 3.3 讨论 | 第76-78页 |
| 第四章 全文结论 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-88页 |
| 致谢 | 第88-89页 |
| 作者简历 | 第89页 |
