| 中文摘要 | 第7-10页 |
| 英文摘要 | 第10-13页 |
| 1 前言 | 第14-17页 |
| 2 材料与方法 | 第17-39页 |
| 2.1 材料 | 第17-21页 |
| 2.1.1 弓形虫、质粒构建和慢病毒感染 | 第17页 |
| 2.1.2 细胞株 | 第17页 |
| 2.1.3 实验动物 | 第17-18页 |
| 2.1.4 主要试剂 | 第18-19页 |
| 2.1.5 常规试剂的配制 | 第19-20页 |
| 2.1.6 主要仪器设备 | 第20-21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-39页 |
| 2.2.1 LV-gra15_Ⅱ-Mφ, LV-Mφ,Mφ 和 Hepa1-6 的复苏、传代，与冻存 | 第21-22页 |
| 2.2.2 LV-gra15_Ⅱ-Mφ, LV-Mφ 稳转后的筛选 | 第22-23页 |
| 2.2.3 流式细胞仪检测细胞转染效率和细胞表面标记 | 第23页 |
| 2.2.4 MTS测定 | 第23页 |
| 2.2.5 Transwell共培养实验 | 第23-24页 |
| 2.2.6 划痕实验 | 第24-25页 |
| 2.2.7 侵袭实验 | 第25-26页 |
| 2.2.8 动物模型的建立 | 第26页 |
| 2.2.9 动物实验分组，尾静脉高压注射和标本留取 | 第26-27页 |
| 2.2.10 总RNA的提取、浓度和纯度的测定 | 第27-28页 |
| 2.2.11 cDNA的合成 | 第28-29页 |
| 2.2.12 逆转录PCR（ RT-PCR） | 第29-30页 |
| 2.2.13 实时定量PCR（qRT-PCR） | 第30-31页 |
| 2.2.14 蛋白印迹（western blot, WB） | 第31-33页 |
| 2.2.15 酶联免疫实验（ELISA） | 第33-35页 |
| 2.2.16 Griess试剂盒检测细胞培养上清中的NO | 第35-36页 |
| 2.2.17 脾淋巴细胞的分离和培养 | 第36页 |
| 2.2.18 脾和瘤体的冰冻切片（frozen section） | 第36-37页 |
| 2.2.19 免疫组化（immunohistochemistry, IHC） | 第37-38页 |
| 2.2.20 数据处理 | 第38-39页 |
| 3 结果 | 第39-49页 |
| 3.1 获得RAW264.7 稳定转染细胞 | 第39-40页 |
| 3.2 GRA15_Ⅱ驱动RAW264.7 向M1极化 | 第40-41页 |
| 3.3 LV-gra15_Ⅱ-Mφ 体内抑制肿瘤细胞Hepa1-6 的增殖 | 第41-44页 |
| 3.4 LV-gra15_Ⅱ-Mφ 治疗荷瘤小鼠脾细胞分泌细胞因子的变化 | 第44-46页 |
| 3.5 LV-gra15_Ⅱ-Mφ 体外抑制Hepa1-6 的侵袭和迁移 | 第46-48页 |
| 3.6 LV-gra15_Ⅱ-Mφ 不会引起 C57BL/6 小鼠明显的同种异体反应 | 第48-49页 |
| 4 讨论 | 第49-52页 |
| 5 结论 | 第52页 |
| 6 参考文献 | 第52-56页 |
| 7 附录 | 第56-58页 |
| 7.1 个人简历 | 第56页 |
| 7.2 攻读硕士期间所获荣誉 | 第56-57页 |
| 7.3 在读期间发表论文情况 | 第57页 |
| 7.4 硕士研究生期间参与科研项目 | 第57-58页 |
| 8 致谢 | 第58-59页 |
| 9 综述 | 第59-70页 |
| 参考文献 | 第65-70页 |
