| 英文缩写词 | 第5-7页 |
| 第一部分 STAT1基因敲除小鼠模型在EV71感染研究中的应用 | 第7-25页 |
| 中文摘要 | 第7-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 前言 | 第9-11页 |
| 材料与方法 | 第11-17页 |
| 1 实验材料 | 第11-12页 |
| 2 实验方法 | 第12-17页 |
| 结果 | 第17-21页 |
| 1 LPS刺激后STAT1基因敲除小鼠血清细胞因子水平降低 | 第17-18页 |
| 2 EV71感染后STAT1基因敲除小鼠症状加重 | 第18-19页 |
| 3 EV71感染后STAT1基因敲除小鼠病理损伤加重 | 第19-20页 |
| 4 EV71感染STAT1基因敲除小鼠与感染ICR小鼠结果比较 | 第20-21页 |
| 讨论 | 第21-22页 |
| 小结 | 第22-23页 |
| 参考文献 | 第23-25页 |
| 第二部分 土拨鼠肝炎病毒持续性感染模型的建立与应用 | 第25-56页 |
| 中文摘要 | 第25-27页 |
| ABSTRACT | 第27-29页 |
| 前言 | 第29-32页 |
| 材料与方法 | 第32-43页 |
| 1 材料 | 第32-33页 |
| 2 实验方法 | 第33-43页 |
| 结果 | 第43-51页 |
| 1 WHV DNA REAL-TIME标准曲线测定 | 第43-44页 |
| 2 土拨鼠肝炎病毒WHV复制 | 第44-45页 |
| 3 肝功酶学指标 | 第45-47页 |
| 4 血清学指标 | 第47-48页 |
| 5 灵芝孢子粉药物对细胞因子的影响 | 第48-50页 |
| 6 病理 | 第50-51页 |
| 讨论 | 第51-52页 |
| 小结 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-56页 |
| 综述 用于乙型肝炎病毒持续性感染研究的动物模型研究进展 | 第56-69页 |
| 1 黑猩猩乙肝模型 | 第58-59页 |
| 2 树鼩乙肝模型 | 第59页 |
| 3 小鼠乙肝模型 | 第59-63页 |
| 4 土拨鼠WHV肝炎模型 | 第63页 |
| 5 小结 | 第63-64页 |
| 6 参考文献 | 第64-69页 |
| 个人简历 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
