| 致谢 | 第7-8页 |
| 摘要 | 第8-11页 |
| Abstract | 第11-14页 |
| 缩略表 | 第15-23页 |
| 第一章 绪论 | 第23-47页 |
| 1.1 活的但非可培养微生物的研究进展 | 第23-35页 |
| 1.1.1 对非可培养微生物的认识 | 第23-26页 |
| 1.1.2 VBNC状态菌的转变及生物学特性 | 第26-28页 |
| 1.1.3 VBNC状态菌的诱导因素 | 第28-31页 |
| 1.1.4 VBNC状态菌的检测 | 第31-33页 |
| 1.1.5 VBNC状态菌的形成机理 | 第33-34页 |
| 1.1.6 VBNC状态菌可培养化的研究 | 第34-35页 |
| 1.2 复苏促进因子的研究进展 | 第35-39页 |
| 1.2.1 藤黄球菌复苏促进因子Rpf | 第35-37页 |
| 1.2.2 Rpf家族蛋白的种类及生物学特性 | 第37-38页 |
| 1.2.3 复苏促进因子Rpf对VBNC状态菌的作用机制 | 第38-39页 |
| 1.3 多氯联苯的微生物降解及潜在功能菌群的复苏培养 | 第39-44页 |
| 1.3.1 多氯联苯简介 | 第40-41页 |
| 1.3.2 多氯联苯的微生物降解 | 第41-42页 |
| 1.3.3 降解PCBs潜在的VBNC状态功能菌群 | 第42-43页 |
| 1.3.4 潜在PCBs降解功能菌群的复苏培养 | 第43-44页 |
| 1.4 论文研究目的、内容与与技术路线 | 第44-47页 |
| 1.4.1 研究目的与意义 | 第44页 |
| 1.4.2 研究内容与技术路线 | 第44-47页 |
| 第二章 藤黄球菌EOM的制备优化及主成分分析 | 第47-68页 |
| 2.1 引言 | 第47-48页 |
| 2.2 材料与方法 | 第48-54页 |
| 2.2.1 菌种M. luteus的来源与培养 | 第48页 |
| 2.2.2 藤黄球菌EOM的制备 | 第48页 |
| 2.2.3 PBD设计法筛选显著因素 | 第48-49页 |
| 2.2.4 中心组合设计及响应面分析 | 第49页 |
| 2.2.5 响应指标的测定 | 第49-50页 |
| 2.2.6 最优条件与模型的验证 | 第50页 |
| 2.2.7 藤黄球菌EOM的提纯固化及表征分析 | 第50-51页 |
| 2.2.8 藤黄球菌EOM的主成分分析 | 第51-52页 |
| 2.2.9 Rpf重组蛋白的合成及分析 | 第52-54页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第54-67页 |
| 2.3.1 影响藤黄球菌EOM中蛋白产量的显著因素及其最优水平 | 第54-57页 |
| 2.3.2 响应面分析及优化模式的验证 | 第57-62页 |
| 2.3.3 藤黄球菌EOM的表征分析及显色反应 | 第62-64页 |
| 2.3.4 藤黄球菌EOM的多糖和蛋白质分析 | 第64-66页 |
| 2.3.5 Rpf重组蛋白的合成及分析 | 第66-67页 |
| 2.4 本章小结 | 第67-68页 |
| 第三章 藤黄球菌EOM对BP/PCBs降解菌群的影响及菌种分离鉴定 | 第68-101页 |
| 3.1 引言 | 第68-69页 |
| 3.2 材料与方法 | 第69-75页 |
| 3.2.1 BP/PCBs降解菌的富集培养 | 第69-70页 |
| 3.2.2 藤黄球菌EOM对菌群活性的影响 | 第70-71页 |
| 3.2.3 藤黄球菌EOM对菌群结构和多样性的影响 | 第71-73页 |
| 3.2.4 单菌株分离及系统发育树构建 | 第73-74页 |
| 3.2.5 单菌株BP/PCBs降解性能测试 | 第74-75页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第75-100页 |
| 3.3.1 藤黄球菌EOM对菌群活性的影响 | 第75-81页 |
| 3.3.2 藤黄球菌EOM对菌群结构及多样性的影响 | 第81-92页 |
| 3.3.3 单菌株分离及系统发育树构建 | 第92-94页 |
| 3.3.4 BP/PCBs降解菌株的筛选及降解性能测试 | 第94-100页 |
| 3.4 本章小结 | 第100-101页 |
| 第四章 BP/PCBs降解菌株TG9~T的多相分类鉴定 | 第101-124页 |
| 4.1 引言 | 第101-102页 |
| 4.2 材料与方法 | 第102-109页 |
| 4.2.1 菌株保藏和参比菌株 | 第102页 |
| 4.2.2 表型特征分析 | 第102-105页 |
| 4.2.3 化学分类特征分析 | 第105-107页 |
| 4.2.4 基因型特征分析 | 第107-109页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第109-122页 |
| 4.3.1 表型特征分析 | 第109-112页 |
| 4.3.2 化学特征分析 | 第112-117页 |
| 4.3.3 基因型特征分析 | 第117-120页 |
| 4.3.4 新种描述 | 第120-122页 |
| 4.4 本章小结 | 第122-124页 |
| 第五章 菌株TG9~T VBNC状态的诱导及形成机理研究 | 第124-145页 |
| 5.1 引言 | 第124-125页 |
| 5.2 材料与方法 | 第125-131页 |
| 5.2.1 VBNC状态的诱导 | 第125-126页 |
| 5.2.2 总菌数、活菌数及可培养菌数的测定 | 第126-127页 |
| 5.2.3 VBNC状态的复苏 | 第127页 |
| 5.2.4 细胞形态及酶活性分析 | 第127-128页 |
| 5.2.5 高通量转录组测序 | 第128-130页 |
| 5.2.6 qPT-PCR验证 | 第130-131页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第131-143页 |
| 5.3.1 VBNC状态的诱导和复苏 | 第131-133页 |
| 5.3.2 VBNC细胞的形态和酶活性变化 | 第133-135页 |
| 5.3.3 高通量转录组测序结果和差异表达基因分析 | 第135-138页 |
| 5.3.4 差异表达基因的GO功能富集分析 | 第138-140页 |
| 5.3.5 差异表达基因的KEGG代谢途径富集分析 | 第140-143页 |
| 5.3.6 差异表达基因的qRT-PCR验证 | 第143页 |
| 5.4 本章小结 | 第143-145页 |
| 第六章 结论与展望 | 第145-149页 |
| 6.1 研究结论 | 第145-147页 |
| 6.2 主要创新点 | 第147页 |
| 6.3 研究展望 | 第147-149页 |
| 参考文献 | 第149-176页 |
| 作者简历、科研成果及奖励 | 第176-177页 |
