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含油废水中产脂肪酶微生物菌种的筛选及表型研究

摘要第1-5页
Abstract第5-11页
第一章 绪论第11-20页
   ·含油废水第11-12页
     ·含油废水的特点及危害第11页
     ·含油废水的处理方法第11-12页
   ·脂肪酶简介第12-14页
     ·脂肪酶的分布第12-13页
     ·脂肪酶的结构第13页
     ·脂肪酶生产影响因素第13-14页
   ·脂肪酶的应用第14-15页
   ·脂肪酶活力测定方法第15-16页
     ·固体培养基平板测定法第16页
     ·滴定法第16页
     ·比色法第16页
   ·微量油含量测定第16-18页
   ·微生物脂肪酶的研究展望第18页
   ·研究的意义与内容第18-20页
     ·研究的意义第18-19页
     ·研究的内容第19-20页
第二章 产脂肪酶菌种的分离、酶活力及生长曲线测定第20-28页
   ·引言第20页
   ·材料与仪器第20-21页
     ·样品来源第20页
     ·主要试剂第20页
     ·主要实验仪器设备第20-21页
   ·实验方法第21-24页
     ·培养基第21页
     ·样品预处理第21-22页
     ·菌种的分离培养第22页
     ·菌种的分离纯化第22页
     ·富集培养第22页
     ·产脂肪酶菌株的筛选第22页
     ·产脂肪酶菌种的细胞破碎第22-23页
     ·p-NPP法测定脂肪酶活力第23-24页
     ·X-1菌株生长曲线测定第24页
   ·结果与分析第24-27页
     ·产脂肪酶菌株的筛选第24-25页
     ·对硝基苯酚标准曲线第25-26页
     ·X-1菌株的生长曲线第26-27页
   ·小结第27-28页
第三章 X-1菌种的生理生化和分子生物学鉴定第28-39页
   ·目的菌种第28页
   ·材料与仪器第28-29页
     ·主要试剂第28页
     ·主要仪器第28-29页
   ·实验方法第29-33页
     ·培养基第29页
     ·常用试剂的配置第29页
     ·培养条件第29-30页
     ·X-1菌株的形态和生理生化指标鉴定第30页
     ·目的菌株基因组DNA的提取第30-31页
     ·琼脂糖凝胶电泳检测第31页
     ·目的菌株16S rDNA的扩增第31-32页
     ·16S rDNA序列的分析及系统发育树的建立第32-33页
   ·结果与分析第33-38页
     ·X-1菌种形态和生理生化实验第33页
     ·X-1菌株基因组DNA提取第33-34页
     ·目的菌株16S rDNA PCR扩增第34-36页
     ·构建系统发育树第36-38页
   ·小结第38-39页
第四章 X-1菌种产酶培养基优化第39-48页
   ·材料第39页
   ·实验方法第39-41页
     ·培养基的配制第39页
     ·种子液的制备第39-40页
     ·碳源的优化第40页
     ·氮源的优化第40页
     ·无机盐的优化第40页
     ·响应面实验第40-41页
     ·验证实验第41页
   ·结果与分析第41-47页
     ·碳源的影响第41-42页
     ·氮源的影响第42-43页
     ·无机盐的影响第43页
     ·响应面实验结果第43-47页
     ·验证实验结果第47页
   ·小结第47-48页
第五章 X-1菌种油脂降解率条件优化第48-56页
   ·材料与仪器第48页
     ·主要仪器第48页
     ·主要试剂第48页
   ·实验方法第48-50页
     ·培养基的配制第48-49页
     ·种子液的制备第49页
     ·培养基中油脂降解率的测定第49页
     ·pH对降解率的影响第49页
     ·转速对降解率的影响第49页
     ·温度对降解率的影响第49-50页
     ·正交试验第50页
     ·验证实验第50页
   ·结果与分析第50-55页
     ·标准曲线第50-51页
     ·pH对降解率的影响第51-52页
     ·转速对降解率的影响第52页
     ·温度对降解率的影响第52-53页
     ·正交试验结果第53-54页
     ·验证实验第54-55页
   ·小结第55-56页
第六章 结论第56-57页
参考文献第57-61页
致谢第61页

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