| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-11页 |
| 第一章 绪论 | 第11-20页 |
| ·金黄色葡萄球菌及其肠毒素研究进展 | 第11-15页 |
| ·金黄色葡萄球菌生物学特性 | 第11-12页 |
| ·金黄色葡萄球菌肠毒素生物学特性 | 第12页 |
| ·金黄色葡萄球菌肠毒素致病性 | 第12页 |
| ·金黄色葡萄球菌及毒素的流行特点 | 第12-13页 |
| ·海产品中金黄色葡萄球菌及其毒素污染海产品现状 | 第13页 |
| ·金黄色葡萄球菌及肠毒素检测方法研究进展 | 第13-15页 |
| ·金黄色葡萄球菌检测方法研究进展 | 第13-14页 |
| ·金黄色葡萄球菌肠毒素检测方法研究进展 | 第14-15页 |
| ·免疫磁快速检测技术研究进展 | 第15-16页 |
| ·免疫磁珠分离技术简介 | 第15-16页 |
| ·免疫磁珠技术在食品微生物检测中的应用 | 第16页 |
| ·两种微生物制剂研究进展 | 第16-18页 |
| ·芽孢杆菌抗菌肽研究进展 | 第17-18页 |
| ·蛹虫草研究进展 | 第18页 |
| ·研究意义与目的 | 第18-19页 |
| ·研究内容 | 第19-20页 |
| 第二章 金黄色葡萄球菌及肠毒素B免疫磁珠的制备 | 第20-30页 |
| ·材料与方法 | 第20-24页 |
| ·实验材料 | 第20-21页 |
| ·原料 | 第20页 |
| ·试剂 | 第20-21页 |
| ·仪器 | 第21页 |
| ·溶液配制方法 | 第21页 |
| ·金黄色葡萄球菌免疫磁珠(IMB_(S.aureus))的制备 | 第21-22页 |
| ·原理 | 第21-22页 |
| ·人IgG与磁珠偶联的基本步骤 | 第22页 |
| ·活化剂对磁珠的活化效果 | 第22页 |
| ·人IgG与磁珠偶联效果评价 | 第22页 |
| ·金黄色葡萄球菌肠毒素B免疫磁珠(IMB_(SEB))的制备 | 第22-24页 |
| ·原理 | 第22-23页 |
| ·金黄色葡萄球菌肠毒素B抗血清的制备 | 第23页 |
| ·SEB抗血清与磁珠偶联基本步骤 | 第23页 |
| ·SEB抗血清与磁珠偶联效果评价 | 第23-24页 |
| ·结果与分析 | 第24-29页 |
| ·IMB_(S.aureus)制备效果 | 第24-26页 |
| ·活化剂对磁珠分离效果 | 第24页 |
| ·人IgG与磁珠偶联效果评价 | 第24-26页 |
| ·金黄色葡萄球菌肠毒素免疫磁珠的制备效果 | 第26-29页 |
| ·anti-SEB效价结果 | 第26-27页 |
| ·anti-SEB与磁珠偶联效果评价 | 第27-29页 |
| ·结论 | 第29页 |
| ·抗体与磁珠偶联一般步骤 | 第29页 |
| ·金黄色葡萄球菌免疫磁珠的制备 | 第29页 |
| ·金黄色葡萄球菌肠毒素免疫磁珠的制备 | 第29页 |
| ·讨论 | 第29-30页 |
| 第三章 金黄色葡萄球菌及肠毒素B免疫磁法的建立 | 第30-50页 |
| ·材料与方法 | 第30-36页 |
| ·材料 | 第30-32页 |
| ·原料 | 第30页 |
| ·试剂 | 第30-31页 |
| ·仪器 | 第31页 |
| ·溶液系统 | 第31-32页 |
| ·金黄色葡萄球菌免疫磁快速检测的建立 | 第32-33页 |
| ·IMB_(S.aureus)法检测S.aureus的基本步骤 | 第32页 |
| ·IMB_(S.aureus)分离S.aureus的条件优化 | 第32-33页 |
| ·IMB_(S.aureus)快速检测法分离S.aureus的效果评价 | 第33页 |
| ·IMB_(S.aureus)快速检测法在对虾中的应用 | 第33页 |
| ·肠毒素B免疫磁快速检测法(IMB_(SEB)-ELISA)的建立 | 第33-36页 |
| ·IMB_(SEB)-ELISA检测SEB的基本步骤 | 第33-34页 |
| ·IMB_(SEB)-ELISA检测SEB条件优化 | 第34-35页 |
| ·制备IMB_(SEB)-ELISA检测SEB的标准曲线 | 第35页 |
| ·IMB_(SEB)-ELISA检测SEB的效果评价 | 第35-36页 |
| ·IMB_(SEB)-ELISA快速检测法在对虾中的应用 | 第36页 |
| ·结果与分析 | 第36-46页 |
| ·IMB_(S.aureus)免疫磁快速检测法的建立 | 第36-40页 |
| ·IMB_(S.aureus)分离S.aureus的条件优化 | 第36-37页 |
| ·IMB_(S.aureus)分离S.aureus的效果评价 | 第37-40页 |
| ·IMB_(S.aureus)快速检测法在对虾中的应用 | 第40页 |
| ·IMB_(SEB)-ELISA快速检测法的建立 | 第40-46页 |
| ·IMB_(SEB)-ELISA对SEB检测条件的优化 | 第40-44页 |
| ·IMB_(SEB)-ELISA检测SEB标准曲线的制备 | 第44页 |
| ·IMB_(SEB)-ELISA检测SEB的效果评价 | 第44-46页 |
| ·IMB_(SEB)-ELISA在对虾中的应用 | 第46页 |
| ·结论 | 第46-48页 |
| ·IMB_(S.aureus)法检测金黄色葡萄球菌方法的建立 | 第46-47页 |
| ·IMB_(S.aureus)法检测金黄色葡萄球菌的最优条件及步骤 | 第46-47页 |
| ·IMB_(S.aureus)法检测金黄色葡萄球菌的效果评价 | 第47页 |
| ·IMB_(S.aureus)法检测对虾中金黄色葡萄球菌的应用 | 第47页 |
| ·IMB_(SEB)-ELISA法检测SEB方法的建立 | 第47-48页 |
| ·IMB_(SEB)-ELISA法检测SEB的最优条件及步骤 | 第47-48页 |
| ·IMB_(SEB)-ELISA法检测SEB的效果评价 | 第48页 |
| ·IMB_(SEB)-ELISA法检测对虾中SEB的应用 | 第48页 |
| ·讨论 | 第48-50页 |
| ·IMB_(S.aureus)法检测金黄色葡萄球菌方法的建立 | 第48-49页 |
| ·IMB_(SEB)-ELISA法检测SEB方法的建立 | 第49-50页 |
| 第四章 免疫磁法评价两种制剂抑制效果 | 第50-58页 |
| ·材料与方法 | 第50-53页 |
| ·材料 | 第50-51页 |
| ·原料 | 第50页 |
| ·试剂 | 第50-51页 |
| ·培养基 | 第51页 |
| ·芽孢杆菌抗菌肽的制备 | 第51页 |
| ·芽孢杆菌抗菌肽发酵方法 | 第51页 |
| ·芽孢杆菌抗菌肽提纯方法 | 第51页 |
| ·蛹虫草制剂的制备 | 第51页 |
| ·两种微生物制剂对凡纳滨对虾中金葡菌及毒素的控制效应 | 第51-53页 |
| ·两种微生物制剂MIC值的测定 | 第51-52页 |
| ·两种生物制剂对虾肉中金葡菌及肠毒素B的控制效应 | 第52-53页 |
| ·结果与分析 | 第53-56页 |
| ·两种微生物制剂对金葡菌的MIC值 | 第53-54页 |
| ·芽孢杆菌抗菌肽MIC值测定 | 第53页 |
| ·蛹虫草制剂MIC值测定 | 第53-54页 |
| ·两种生物制剂对虾肉中金葡菌及肠毒素B的控制效应 | 第54-56页 |
| ·结论 | 第56-58页 |
| ·抗菌肽制剂对虾肉中金黄色葡萄球菌及毒素控制效果 | 第56-57页 |
| ·蛹虫草制剂对虾肉中金黄色葡萄球菌及毒素控制效果 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-62页 |
| 致谢 | 第62-64页 |
| 附录 | 第64页 |
