| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-8页 |
| 1 绪论 | 第8-16页 |
| ·多糖的研究概况 | 第8-14页 |
| ·多糖的提取分离 | 第8-9页 |
| ·多糖的纯化 | 第9-10页 |
| ·多糖的结构分析 | 第10-12页 |
| ·多糖的免疫活性 | 第12-14页 |
| ·多糖研究的发展趋势 | 第14页 |
| ·红松的研究概况 | 第14-15页 |
| ·红松松仁的主要化学成分 | 第14页 |
| ·松松仁的功能 | 第14-15页 |
| ·研究内容和意义 | 第15-16页 |
| 2 松仁多糖的提取工艺研究 | 第16-27页 |
| ·试验材料 | 第16页 |
| ·材料 | 第16页 |
| ·试剂 | 第16页 |
| ·仪器 | 第16页 |
| ·试验方法 | 第16-19页 |
| ·原料预处理 | 第16-17页 |
| ·工艺流程 | 第17页 |
| ·多糖含量测定方法 | 第17页 |
| ·热水浸提法 | 第17-18页 |
| ·超声波辅助提取法 | 第18页 |
| ·微波辅助提取法 | 第18-19页 |
| ·数据处理方法 | 第19页 |
| ·结果与讨论 | 第19-26页 |
| ·多糖含量标准曲线的测定 | 第19-20页 |
| ·热水浸提法的结果分析 | 第20-21页 |
| ·超声波辅助提取法的结果分析 | 第21-23页 |
| ·微波辅助提取法的结果分析 | 第23-25页 |
| ·三种提取方法的比较 | 第25-26页 |
| ·本章小结 | 第26-27页 |
| 3 松仁多糖的分离纯化 | 第27-39页 |
| ·试验材料 | 第27-28页 |
| ·材料 | 第27页 |
| ·试剂 | 第27页 |
| ·仪器 | 第27-28页 |
| ·试验方法 | 第28-30页 |
| ·工艺流程 | 第28页 |
| ·除蛋白 | 第28页 |
| ·DEAE-52离子交换层析 | 第28-30页 |
| ·Sephadex G-100凝胶过滤层析 | 第30页 |
| ·纯度鉴定 | 第30页 |
| ·数据处理方法 | 第30页 |
| ·结果与讨论 | 第30-38页 |
| ·蛋白质及多糖含量的测定 | 第30-31页 |
| ·四种除蛋白方法的比较 | 第31-32页 |
| ·DEAE-52离子交换层析 | 第32-34页 |
| ·凝胶过滤层析 | 第34-37页 |
| ·纯度鉴定 | 第37-38页 |
| ·本章小结 | 第38-39页 |
| 4 松仁多糖一级结构的初步研究 | 第39-50页 |
| ·试验材料 | 第39页 |
| ·材料 | 第39页 |
| ·试剂 | 第39页 |
| ·仪器 | 第39页 |
| ·试验方法 | 第39-41页 |
| ·基本理化性质分析 | 第39-40页 |
| ·相对分子质量测定 | 第40页 |
| ·单糖组成分析 | 第40-41页 |
| ·光谱测定 | 第41页 |
| ·结果与讨论 | 第41-48页 |
| ·基本理化性质分析 | 第41页 |
| ·相对分子质量测定 | 第41-42页 |
| ·单糖组成分析 | 第42-44页 |
| ·光谱分析 | 第44-48页 |
| ·本章小结 | 第48-50页 |
| 5 松仁多糖的免疫活性研究 | 第50-56页 |
| ·试验材料 | 第50页 |
| ·材料 | 第50页 |
| ·试剂 | 第50页 |
| ·仪器 | 第50页 |
| ·试验方法 | 第50-52页 |
| ·试验动物及分组 | 第50页 |
| ·脏器/体重的测定 | 第50-51页 |
| ·细胞免疫功能的测定 | 第51页 |
| ·单核—巨噬细胞功能的测定 | 第51页 |
| ·细胞因子白介素(Interlaukins)IL-2和IL-6的测定 | 第51-52页 |
| ·数据处理方法 | 第52页 |
| ·结果与讨论 | 第52-55页 |
| ·松仁多糖对小鼠体重的影响 | 第52页 |
| ·松仁多糖对小鼠脏器/体重比值的影响 | 第52-53页 |
| ·松仁多糖对小鼠细胞免疫功能的影响 | 第53页 |
| ·松仁多糖对小鼠单核-巨噬细胞功能的影响 | 第53-54页 |
| ·小鼠脾细胞的IL-2和IL-6的测定 | 第54-55页 |
| ·本章小结 | 第55-56页 |
| 结论 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-62页 |
| 附录 | 第62-65页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |