| 1 引言 | 第1-16页 |
| ·固相微萃取(SPME)技术 | 第10-12页 |
| ·SPME装置简介 | 第10页 |
| ·SPME的原理 | 第10-11页 |
| ·常用SPME萃取涂层的种类和选择 | 第11-12页 |
| ·SPME-HPLC联用技术 | 第12页 |
| ·手动式SPME-HPLC联用接口 | 第12页 |
| ·管内SPME-HPLC联用接口 | 第12页 |
| ·SPME-HPLC联用技术应用方面的进展 | 第12-14页 |
| ·展望 | 第14-15页 |
| ·立题意义及主要研究内容 | 第15-16页 |
| ·立题背景、意义 | 第15页 |
| ·主要研究内容 | 第15-16页 |
| 2 SPME-HPLC联用分析氨基甲酸酯类农药残留 | 第16-24页 |
| ·试验部分 | 第16-17页 |
| ·试验主要试剂 | 第16页 |
| ·试验主要仪器 | 第16-17页 |
| ·试验方法 | 第17页 |
| ·结果与分析 | 第17-21页 |
| ·SPME萃取条件的优化 | 第17-20页 |
| ·HPLC检测波长的选择 | 第20-21页 |
| ·线性范围、检出限及精密度 | 第21-22页 |
| ·水样标准曲线的绘制 | 第21-22页 |
| ·回收率的测定 | 第22页 |
| ·番茄样品的测定 | 第22页 |
| ·番茄样品的线性范围、检出限和精密度 | 第22页 |
| ·番茄样品回收率的测定 | 第22页 |
| ·结论 | 第22-24页 |
| 3 SPME-HPLC联用测定番茄中的多菌灵和噻菌灵 | 第24-31页 |
| ·试验部分 | 第24-25页 |
| ·试验主要试剂 | 第24页 |
| ·试验主要仪器 | 第24-25页 |
| ·SPME-HPLC分析 | 第25页 |
| ·番茄样品处理及标准曲线的绘制 | 第25页 |
| ·结果与讨论 | 第25-30页 |
| ·SPME条件的优化 | 第25-28页 |
| ·HPLC条件的有优化 | 第28页 |
| ·线性范围、检出限和精密度 | 第28-29页 |
| ·实际样品分析和回收率 | 第29-30页 |
| ·结论 | 第30-31页 |
| 4 SPME-HPLC联用测定黄瓜中的乙霉威 | 第31-36页 |
| ·试验部分 | 第31-32页 |
| ·试验主要试剂 | 第31页 |
| ·试验主要仪器 | 第31页 |
| ·SPME-HPLC分析 | 第31-32页 |
| ·黄瓜样品处理及标准曲线的绘制 | 第32页 |
| ·结果与讨论 | 第32-34页 |
| ·激发波长和发射波长的选择 | 第32页 |
| ·SPME萃取条件的优化 | 第32-34页 |
| ·方法的线性范围、检出限和精密度 | 第34-35页 |
| ·回收率的测定和实际样品分析 | 第35页 |
| ·结论 | 第35-36页 |
| 5 MAE-SPME-HPLC联用测定氨基甲酸酯类农药残留 | 第36-42页 |
| ·试验部分 | 第37-38页 |
| ·试验主要试剂 | 第37页 |
| ·试验主要仪器 | 第37-38页 |
| ·试验方法 | 第38页 |
| ·结果与讨论 | 第38页 |
| ·SPME萃取条件的优化 | 第38页 |
| ·HPLC检测波长的选择 | 第38页 |
| ·微波萃取参数的选择 | 第38-40页 |
| ·微波萃取时间的选择 | 第38-39页 |
| ·微波萃取温度的选择 | 第39页 |
| ·微波助萃取与直接SPME的比较 | 第39-40页 |
| ·洋白菜样品的测定 | 第40-41页 |
| ·洋白菜样品标准曲线的绘制 | 第40页 |
| ·回收率的测定 | 第40-41页 |
| ·结论 | 第41-42页 |
| 6 结论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-51页 |
| 在读期间发表的学术论文 | 第51-52页 |
| 作者简历 | 第52-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
| 附: 发表文章 | 第54-61页 |
