| 符号与缩写 | 第1-7页 |
| 中文摘要 | 第7-8页 |
| 英文摘要 | 第8-10页 |
| 第一章 单个生物分子的检测 | 第10-46页 |
| 1．1 单分子检测概况 | 第10页 |
| 1．2 单分子检测和操纵技术 | 第10-21页 |
| 1．2．1 SPM | 第10-11页 |
| 1．2．2 光学技术 | 第11-18页 |
| 1．2．3 单分子检测常用方法 | 第18-21页 |
| 1．3 单分子检测的应用 | 第21-28页 |
| 1．3．1 分子马达 | 第21-23页 |
| 1．3．2 DNA的转录 | 第23-24页 |
| 1．3．3 动力学 | 第24-26页 |
| 1．3．4 细胞信号传导 | 第26-28页 |
| 1．4 单分子检测的技术关键及单分子证据 | 第28-31页 |
| 1．4．1 单分子检测的技术关键 | 第28-29页 |
| 1．4．2 单分子证据 | 第29-31页 |
| 1．5 荧光探针 | 第31-36页 |
| 1．6 展望 | 第36-38页 |
| 1．7 参考文献 | 第38-46页 |
| 第二章 全内反射荧光显微镜观测人胃癌细胞膜上的转铁蛋白受体37 | 第46-74页 |
| 2．1 引言 | 第46-48页 |
| 2．2 实验部分 | 第48-52页 |
| 2．2．1 仪器 | 第48页 |
| 2．2．2 材料与试剂 | 第48-49页 |
| 2．2．3 实验步骤 | 第49-52页 |
| 2．2．3．1 培养池的制作 | 第49-50页 |
| 2．2．3．2 灭菌 | 第50页 |
| 2．2．3．3 细胞计数 | 第50-51页 |
| 2．2．3．4 胃癌细胞膜上转铁蛋白受体的检测 | 第51-52页 |
| 2．3 结果与讨论 | 第52-71页 |
| 2．3．1 背景噪音 | 第52-56页 |
| 2．3．1．1 玻片 | 第52-53页 |
| 2．3．1．2 济液 | 第53-56页 |
| 2．3．2 光漂白 | 第56-58页 |
| 2．3．3 FITC-Tf的检测 | 第58-59页 |
| 2．3．4 全内反射检测细胞表面受体的条件 | 第59-66页 |
| 2．3．4．1 细胞贴壁条件 | 第59-61页 |
| 2．3．4．1．1 时间 | 第59-61页 |
| 2．3．4．1．2 细胞密度 | 第61页 |
| 2．3．4．2 FITC-Tf与细胞的孵育条件 | 第61-66页 |
| 2．3．4．2．1 温度 | 第61-63页 |
| 2．3．4．2．2 浓度 | 第63-64页 |
| 2．3．4．2．3 时间 | 第64-65页 |
| 2．3．4．2．4 蛋白加入顺序 | 第65-66页 |
| 2．3．5 全内反射观测胃癌细胞膜上的受体分子 | 第66-71页 |
| 2．3．5．1 落射、全内反射细胞膜受体成像比较 | 第67-68页 |
| 2．3．5．2 细胞膜受体结合转铁蛋白的特异性 | 第68页 |
| 2．3．5．3 全内反射荧光显微镜观测细胞膜受体的轨迹 | 第68-71页 |
| 2．4 结论 | 第71页 |
| 2．5 参考文献 | 第71-74页 |
| 第三章 全内反射荧光显微镜检测人胃癌细胞单个内涵体的形成 | 第74-90页 |
| 3．1 引言 | 第74-75页 |
| 3．2 实验部分 | 第75-76页 |
| 3．2．1 器 | 第75页 |
| 3．2．2 材料与试剂 | 第75-76页 |
| 3．2．3 实验步骤 | 第76页 |
| 3．2．3．1 培养池的制作，灭菌，细胞计数 | 第76页 |
| 3．2．3．2 全内反射荧光显微镜检测细胞的内吞 | 第76页 |
| 3．3 结果与讨论 | 第76-87页 |
| 3．3．1 Alexa488-Tf的检测 | 第76-79页 |
| 3．3．2 转铁蛋白内吞的测定 | 第79-80页 |
| 3．3．3 细胞内吞的条件 | 第80-83页 |
| 3．3．3．1 细胞贴壁条件 | 第80页 |
| 3．3．3．2 Alexa485标记的转铁蛋白与细胞的孵育条件 | 第80-83页 |
| 3．3．3．2．1 温度 | 第80-81页 |
| 3．3．3．2．2 时间 | 第81-83页 |
| 3．3．4 全内反射荧光显微镜检测细胞上受体分子的运动 | 第83-85页 |
| 3．3．5 全内反射荧光显微镜检测细胞上单个内涵体的形成 | 第85-87页 |
| 3．4 结论 | 第87页 |
| 3．5 参考文献 | 第87-90页 |
| 致谢 | 第90页 |
