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磁性壳聚糖微球固定辣根过氧化物酶的研究

Ⅰ概述第1-40页
 1 磁性高分子微球的研究进展第9-21页
  1.1 磁性高分子微球的制备第9-13页
  1.2 磁性高分子微球的性质第13-14页
  1.3 磁性高分子微球的应用第14-20页
  1.4 结论第20-21页
 2 酶的固定化第21-26页
  2.1 磁、光、辐射、声等物理新技术的应用第23-24页
  2.2 不同固定化方法的联用第24-25页
  2.3 多酶联合固定化技术第25页
  2.4 载体的改进第25-26页
  2.5 结论第26页
 3 甲壳素/壳聚糖在固定化酶中的应用第26-36页
  3.1 甲壳素与壳聚糖的结构和性质第27-29页
  3.2 甲壳素/壳聚糖在固定化酶中的应用第29-34页
  3.3 结论第34-36页
 参考文献第36-40页
Ⅱ 磁性壳聚糖微球(磁性CS-M)的合成与表征第40-50页
 1 引言第40页
 2 实验部分第40-42页
  2.1 材料与仪器第40页
  2.2 磁流体的制备第40-41页
  2.3 壳聚糖微球的制备第41页
  2.4 磁性CS-M的制备第41页
  2.5 分析测试第41-42页
 3 结果与讨论第42-48页
  3.1 磁流体及微球的制备第42-44页
  3.2 磁性胶体粒子及微球的形态第44-45页
  3.3 磁流体及微球的IR分析图第45-46页
  3.4 磁性胶体粒子的分散性和磁响应性第46-47页
  3.5 磁性CS-M的悬挂醛基和弱碱交换量的测定第47-48页
  3.6 磁性CS-M的含铁量和磁化率第48页
 4 结论第48-49页
 参考文献第49-50页
Ⅲ 磁性CS-M固定化HRP的研究第50-67页
 1 前言第50-51页
 2 实验内容第51-52页
  2.1 仪器及试剂第51页
  2.2 HRP的固定化第51页
  2.3 酶活力的测定第51-52页
 3 结果与讨论第52-64页
  3.1 酶的固定化条件第52-57页
  3.2 酶学性质测定第57-64页
 4 结论第64-66页
 参考文献第66-67页
Ⅳ 磁性CS-M固定化HRP处理含酚废水的初步研究第67-77页
 1 引言第67页
 2 实验部分第67-69页
  2.1 仪器和试剂第68页
  2.2 实验方法第68页
  2.3 反应机理第68-69页
 3 结果与讨论第69-75页
  3.1 反应机理的试验第69页
  3.2 反应时间对酚去除率的影响第69-70页
  3.3 酶活力对酚去除率的影响第70-72页
  3.4 H_2O_2浓度对酚去除率的影响第72-73页
  3.5 酚浓度对酚去除率的影响第73-74页
  3.6 酶催化氧化混合酚废水的试验第74-75页
 4 结论第75-76页
 参考文献第76-77页
结束语第77页

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