| 摘要 | 第3-6页 |
| ABSTRACT | 第6-10页 |
| 缩略词表 | 第15-17页 |
| 第一章 绪论 | 第17-21页 |
| 第二章 BMSC-Exos复合PIC水凝胶对软骨修复的效果 | 第21-41页 |
| 2.1 前言 | 第21-22页 |
| 2.2 材料和方法 | 第22-33页 |
| 2.2.1 实验动物 | 第22页 |
| 2.2.2 主要试剂 | 第22-23页 |
| 2.2.3 主要溶液配制 | 第23页 |
| 2.2.4 主要仪器 | 第23-24页 |
| 2.2.5 兔BMSCs和软骨细胞的提取和鉴定 | 第24-26页 |
| 2.2.6 BMSC-Exos和AC-Exos的提取和鉴定 | 第26-28页 |
| 2.2.7 兔膝骨软骨缺损动物实验 | 第28-30页 |
| 2.2.8 体外实验 | 第30-33页 |
| 2.2.9 统计学分析 | 第33页 |
| 2.3 结果 | 第33-38页 |
| 2.3.1 BMSCs和软骨细胞的提取和鉴定 | 第33-34页 |
| 2.3.2 BMSC-Exos和AC-Exos的提取和鉴定 | 第34-35页 |
| 2.3.3 BMSC-Exos和AC-Exos对软骨细胞的正常表型维持有不同影响 | 第35-36页 |
| 2.3.4 BMSC-Exos和AC-Exos局部移植对兔软骨缺损的不同修复效果 | 第36-38页 |
| 2.4 讨论 | 第38-39页 |
| 2.5 结论 | 第39-41页 |
| 第三章 iPS-MSC-Exos复合PIC水凝胶用于软骨组织再生修复 | 第41-56页 |
| 3.1 前言 | 第41-42页 |
| 3.2 材料和方法 | 第42-48页 |
| 3.2.1 hiPS-MSCs的诱导和体外扩增 | 第42-43页 |
| 3.2.2 hiPS-MSC-Exos的提取和纯化 | 第43页 |
| 3.2.3 hiPS-MSC-Exos的鉴定 | 第43-45页 |
| 3.2.4 EHG水凝胶的制备和特性检测 | 第45页 |
| 3.2.5 软骨细胞对hiPS-MSC-Exos的摄取 | 第45-46页 |
| 3.2.6 EHG水凝胶对外泌体的释放能力检测 | 第46页 |
| 3.2.7 hiPS-MSC-Exos对BMSCs和软骨细胞的影响 | 第46-47页 |
| 3.2.8 体内实验检测EHG水凝胶对细胞增殖和迁移的影响 | 第47页 |
| 3.2.9 体内实验检测EHG水凝胶的软骨再生能力 | 第47-48页 |
| 3.2.10 统计学分析 | 第48页 |
| 3.3 结果 | 第48-53页 |
| 3.3.1 hiPS-MSC-Exos的提取和EHG水凝胶的制备 | 第48-49页 |
| 3.3.2 EHG水凝胶高效负载hiPS-MSC-Exos | 第49-50页 |
| 3.3.3 EHG水凝胶对细胞有积极的调节作用 | 第50-51页 |
| 3.3.4 EHG水凝胶具有紧密的软骨整合性和高效的细胞募集能力 | 第51-52页 |
| 3.3.5 EHG水凝胶促进透明软骨再生并产生良好的组织整合性 | 第52-53页 |
| 3.4 讨论 | 第53-55页 |
| 3.5 结论 | 第55-56页 |
| 第四章 PIC水凝胶在修复软骨损伤中的应用前景 | 第56-70页 |
| 4.1 前言 | 第56-57页 |
| 4.2 材料和方法 | 第57-61页 |
| 4.2.1 兔血来源PRP的提取 | 第57页 |
| 4.2.2 HNPRP水凝胶的制备 | 第57-58页 |
| 4.2.3 HNPRP水凝胶的流变学特性检测 | 第58页 |
| 4.2.4 HNPRP水凝胶的形态检测 | 第58页 |
| 4.2.5 HNPRP水凝胶的生物相容性检测 | 第58页 |
| 4.2.6 HNPRP水凝胶对PRP中生长因子的释放动力学检测 | 第58-59页 |
| 4.2.7 HNPRP水凝胶的组织粘附性检测 | 第59页 |
| 4.2.8 细胞增殖和迁移能力检测 | 第59-60页 |
| 4.2.9 体内实验 | 第60-61页 |
| 4.2.10 统计学分析 | 第61页 |
| 4.3 结果 | 第61-68页 |
| 4.3.1 HNPRP水凝胶的表征 | 第61-62页 |
| 4.3.2 HNPRP水凝胶具有良好的生物相容性 | 第62-63页 |
| 4.3.3 HNPRP水凝胶可以长效缓释生长因子 | 第63-64页 |
| 4.3.4 HNPRP水凝胶具有强大的组织粘附力 | 第64-65页 |
| 4.3.5 HNPRP水凝胶显著增强软骨细胞和BMSCs的增殖和迁移能力 | 第65-66页 |
| 4.3.6 HNPRP水凝胶促进了透明软骨新生并显示良好的组织整合性 | 第66-68页 |
| 4.4 讨论 | 第68-69页 |
| 4.5 结论 | 第69-70页 |
| 第五章 iPS-MSC-Exos防治股骨头坏死的作用及机制 | 第70-86页 |
| 5.1 前言 | 第70-71页 |
| 5.2 材料和方法 | 第71-78页 |
| 5.2.1 hiPS-MSCs的诱导和体外扩增 | 第71页 |
| 5.2.2 hiPS-MSC-Exos的提取和纯化 | 第71-72页 |
| 5.2.3 hiPS-MSC-Exos的鉴定 | 第72-73页 |
| 5.2.4 体内实验 | 第73-75页 |
| 5.2.5 hiPS-MSC-Exos对血管内皮细胞的影响 | 第75-76页 |
| 5.2.6 验证hiPS-MSC-Exos与PI3K/Akt信号通路的关系 | 第76-78页 |
| 5.2.7 统计学分析 | 第78页 |
| 5.3 结果 | 第78-84页 |
| 5.3.1 hiPS-MSC-Exos的鉴定 | 第78-79页 |
| 5.3.2 hiPS-MSC-Exos对骨坏死的防治作用 | 第79-81页 |
| 5.3.3 hiPS-MSC-Exos增强内皮细胞成血管能力 | 第81-82页 |
| 5.3.4 hiPS-MSC-Exos通过激活PI3K/Akt信号通路增强内皮细胞功能 | 第82-84页 |
| 5.4 讨论 | 第84-85页 |
| 5.5 结论 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-94页 |
| 致谢 | 第94-95页 |
| 博士在读期间发表论文和科研成果 | 第95-97页 |
