| 摘要 | 第7-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 缩略词 | 第13-14页 |
| 前言 | 第14-17页 |
| 第一章 对乙酰氨基酚小鼠肝损伤模型的建立 | 第17-36页 |
| 1 试验材料 | 第17-19页 |
| 1.1 仪器 | 第17-18页 |
| 1.2 试剂 | 第18-19页 |
| 1.3 实验动物 | 第19页 |
| 2 实验方法 | 第19-26页 |
| 2.1 实验溶液的配制 | 第19-21页 |
| 2.2 动物处理 | 第21-22页 |
| 2.3 血清转氨酶水平检测 | 第22页 |
| 2.4 肝脏GSH含量测定 | 第22页 |
| 2.5 肝切片病理生理学考察 | 第22页 |
| 2.6 不同溶剂对小鼠肝微粒体CYP2E1酶的抑制作用 | 第22-23页 |
| 2.7 WesternBlot分析 | 第23-25页 |
| 2.8 数据处理 | 第25-26页 |
| 3 实验结果 | 第26-33页 |
| 3.1 不同剂量APAP对小鼠转氨酶水平的影响 | 第26页 |
| 3.2 禁食对APAP造模后小鼠血清转氨酶水平的影响 | 第26-27页 |
| 3.3 PG与HS15对APAP致肝损伤小鼠血浆ALT、AST酶水平的影响 | 第27-28页 |
| 3.4 PG与HS15对APAP致肝损伤小鼠肝脏中GSH含量的影响 | 第28-29页 |
| 3.5 PG与HS15对APAP致肝损伤小鼠肝切片病理生理学的影响 | 第29-30页 |
| 3.6 PG与HS15对小鼠CYP2E1的影响 | 第30-32页 |
| 3.7 PG与HS15对CYP2E1蛋白表达量的影响 | 第32-33页 |
| 4 讨论 | 第33-35页 |
| 5 本章小结 | 第35-36页 |
| 第二章 鸢尾苷元对小鼠APAP肝损伤的保护作用 | 第36-56页 |
| 1 仪器与材料 | 第36-37页 |
| 1.1 仪器 | 第36-37页 |
| 1.2 试剂 | 第37页 |
| 1.3 动物 | 第37页 |
| 2 实验方法 | 第37-40页 |
| 2.1 溶液的配制 | 第37-38页 |
| 2.2 动物处理 | 第38-39页 |
| 2.3 血清转氨酶水平检测 | 第39页 |
| 2.4 肝脏生化指标水平检测 | 第39-40页 |
| 2.5 肝切片病理生理学考察 | 第40页 |
| 2.6 数据处理 | 第40页 |
| 3 实验结果 | 第40-54页 |
| 3.1 TG预处理对APAP致肝损伤小鼠的保护作用 | 第40-48页 |
| 3.2 TG后处理对APAP致肝损伤小鼠的保护作用 | 第48-54页 |
| 4 讨论 | 第54-55页 |
| 5 本章小结 | 第55-56页 |
| 第三章 鸢尾苷元对APAP肝损伤的保护机制 | 第56-71页 |
| 1 仪器与材料 | 第56-57页 |
| 1.1 仪器 | 第56页 |
| 1.2 试剂 | 第56-57页 |
| 2 实验方法 | 第57-61页 |
| 2.1 溶液的配制 | 第57页 |
| 2.2 TG对小鼠肝CYP2E1的抑制作用 | 第57页 |
| 2.3 蛋白免疫印迹 | 第57-58页 |
| 2.4 实时荧光定量PCR | 第58-61页 |
| 2.5 数据处理 | 第61页 |
| 3 实验结果 | 第61-68页 |
| 3.1 TG对小鼠肝微粒体CYP2E1抑制的IC50值 | 第61-62页 |
| 3.2 TG预处理对小鼠APAP肝损伤的保护机制 | 第62-65页 |
| 3.3 TG后处理对小鼠APAP肝损伤的保护机制 | 第65-68页 |
| 4 讨论 | 第68-70页 |
| 5 本章小结 | 第70-71页 |
| 结论和展望 | 第71-72页 |
| 1 全文总结 | 第71页 |
| 2 创新性 | 第71页 |
| 3 展望 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-76页 |
| 综述 | 第76-87页 |
| 参考文献 | 第83-87页 |
| 致谢 | 第87-88页 |
| 附录 | 第88页 |
