| 摘要 | 第3-4页 |
| abstract | 第4-5页 |
| 主要英文缩略词对照表 | 第9-10页 |
| 第1章 前言 | 第10-32页 |
| 1.1 昆虫与共生微生物 | 第10-12页 |
| 1.1.1 微生物组 | 第10页 |
| 1.1.2 昆虫肠道菌群概述 | 第10-11页 |
| 1.1.3 昆虫与微生物之间的相互作用 | 第11-12页 |
| 1.2 昆虫系统性免疫应答 | 第12-15页 |
| 1.2.1 昆虫对外源入侵信号的识别 | 第12-13页 |
| 1.2.2 细胞免疫 | 第13页 |
| 1.2.3 体液免疫 | 第13-15页 |
| 1.3 昆虫局部免疫应答 | 第15-23页 |
| 1.3.1 昆虫肠道结构 | 第15-17页 |
| 1.3.2 Duox-ROS免疫应答途径 | 第17-20页 |
| 1.3.3 IMD-AMPs免疫应答途径 | 第20-23页 |
| 1.4 昆虫主要的免疫应答传导途径 | 第23-27页 |
| 1.4.1 Toll免疫应答途径 | 第23-24页 |
| 1.4.2 IMD免疫应答途径 | 第24-26页 |
| 1.4.3 JAK/STAT免疫应答途径 | 第26-27页 |
| 1.5 CCP与Mesh | 第27-29页 |
| 1.5.1 CCP结构域元件 | 第27页 |
| 1.5.2 Mesh基因研究概况 | 第27-29页 |
| 1.6 论文的研究目的和主要研究内容 | 第29-32页 |
| 1.6.1 论文研究的目的意义 | 第29-30页 |
| 1.6.2 论文研究主要研究内容 | 第30-32页 |
| 第2章 实验材料与方法 | 第32-47页 |
| 2.1 实验材料 | 第32-36页 |
| 2.1.1 果蝇品系与培养 | 第32-34页 |
| 2.1.2 埃及依蚊的培养 | 第34页 |
| 2.1.3 果蝇S2细胞的培养 | 第34页 |
| 2.1.4 果蝇肠道共生菌和致病菌的培养 | 第34页 |
| 2.1.5 抗体 | 第34-35页 |
| 2.1.6 药品与试剂 | 第35页 |
| 2.1.7 常用溶液配制 | 第35-36页 |
| 2.2 实验仪器 | 第36-37页 |
| 2.3 实验方法 | 第37-47页 |
| 2.3.1 昆虫的基因沉默 | 第37-40页 |
| 2.3.2 DmMesh基因敲除 | 第40-42页 |
| 2.3.3 昆虫肠道组织RNA的提取和反转录 | 第42页 |
| 2.3.4 荧光定量PCR | 第42页 |
| 2.3.5 昆虫总蛋白提取、蛋白免疫印迹技术 | 第42-43页 |
| 2.3.6 昆虫肠道ROS活性检测 | 第43页 |
| 2.3.7 昆虫肠道共生菌总量测定 | 第43页 |
| 2.3.8 无菌昆虫的获得 | 第43-44页 |
| 2.3.9 昆虫肠道共生菌的分离与鉴定 | 第44页 |
| 2.3.10 昆虫肠道共生菌数量测定 | 第44-45页 |
| 2.3.11 果蝇肠道完整性检测(Smurfassay) | 第45页 |
| 2.3.12 Fluo-3/AM染色 | 第45页 |
| 2.3.13 昆虫肠道共生菌16SrRNA测序与16SrDNA焦磷酸测序.. | 第45页 |
| 2.3.14 高通量RNA测序 | 第45-47页 |
| 第3章 Mesh在昆虫肠道功能的研究 | 第47-60页 |
| 3.1 引言 | 第47页 |
| 3.2 实验结果与分析 | 第47-58页 |
| 3.2.1 沉默Mesh在mRNA及蛋白水平对昆虫肠道微生物组负荷的影响 | 第47-51页 |
| 3.2.2 沉默Mesh转录组测序分析 | 第51-52页 |
| 3.2.3 Mesh介导Duox的表达对昆虫肠道微生物组负荷的影响 | 第52-57页 |
| 3.2.4 Mesh对昆虫肠道微生物组成的影响 | 第57-58页 |
| 3.3 结论 | 第58-60页 |
| 第4章 Mesh-Duox调控昆虫肠道微生物组的传导途径 | 第60-73页 |
| 4.1 引言 | 第60页 |
| 4.2 实验结果与分析 | 第60-71页 |
| 4.2.1 Mesh通过Arrestin介导的MAPK磷酸化途径调节Duox表达 | 第60-65页 |
| 4.2.2 Mesh介导IMD和P38MAPK传导途径的研究 | 第65-67页 |
| 4.2.3 Mesh介导Gaq-PLCβ-Ca2+传导途径的研究 | 第67-69页 |
| 4.2.4 Mesh调节Duox,但不调节Nox-ROS的产生 | 第69-71页 |
| 4.3 结论 | 第71-73页 |
| 第5章 Mesh基因在昆虫肠道功能机制的验证 | 第73-80页 |
| 5.1 引言 | 第73页 |
| 5.2 实验结果与分析 | 第73-78页 |
| 5.2.1 食物源细菌引起Mesh介导(Mesh,Arrestin和Duox)信号分子的变化 | 第73-74页 |
| 5.2.2 共生菌引起Mesh介导(Mesh,Arrestin和Duox)信号分子的变化.. | 第74-77页 |
| 5.2.3 Mesh介导信号分子的沉默对生存率的影响 | 第77-78页 |
| 5.3 结论 | 第78-80页 |
| 第6章 总结与展望 | 第80-85页 |
| 6.1 讨论 | 第80-81页 |
| 6.2 总结 | 第81-82页 |
| 6.3 展望 | 第82-85页 |
| 6.3.1 昆虫肠道共生菌配体在调节Mesh介导Duox表达的作用 | 第82-83页 |
| 6.3.2 Mesh介导的MAPK信号调节基因LYSC9的表达 | 第83页 |
| 6.3.3 Mesh介导的Duox的表达调节病原菌方面的研究 | 第83页 |
| 6.3.4 Mesh如何感应细菌分泌的代谢物或者PAMP | 第83-85页 |
| 第7章 其他研究工作 | 第85-98页 |
| 7.1 摘要 | 第85页 |
| 7.2 前言 | 第85-86页 |
| 7.3 实验结果与分析 | 第86-98页 |
| 7.3.1 果蝇中CRISPR系统优化及lncRNA敲除 | 第86-90页 |
| 7.3.2 1/3的lncRNA在果蝇精子发生后期起作用 | 第90页 |
| 7.3.3 lncRNA的作用机制 | 第90-96页 |
| 7.3.4 讨论与展望 | 第96-98页 |
| 参考文献 | 第98-109页 |
| 致谢 | 第109-111页 |
| 附录 论文中的附表 | 第111-114页 |
| 个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第114页 |
