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丹皮酚通过调节NF-κB信号通路改善干眼动物模型中的炎症反应

摘要第4-5页
Abstract第5页
第一章 前言第10-22页
    1.1 干眼第10-18页
        1.1.1 干眼的定义与流行病学第10页
        1.1.2 干眼涉及的泪膜功能单位的组织解剖第10-12页
        1.1.3 干眼的病理生理机制第12-16页
        1.1.4 干眼的动物模型第16-17页
        1.1.5 干眼的抗炎治疗第17-18页
    1.2 丹皮酚第18-20页
        1.2.1 丹皮酚概述第18-19页
        1.2.2 丹皮酚的药理作用及其相关机制第19-20页
    1.3 干眼中的炎症信号通路第20-22页
        1.3.1 眼表炎症相关信号通路第20页
        1.3.2 NF-κB信号通路第20-21页
        1.3.3 NF-κB信号通路与细胞凋亡第21-22页
第二章 实验材料第22-26页
    2.1 实验动物第22页
    2.2 实验药物第22页
    2.3 实验试剂第22-25页
        2.3.1 主要试剂配制第22-23页
        2.3.2 主要实验试剂及耗材第23-25页
    2.4 实验仪器及设备第25-26页
第三章 实验方法第26-46页
    3.1 小鼠干眼动物模型建立及分组第26页
    3.2 基础泪液分泌量测定第26页
    3.3 OGD荧光染色第26-27页
    3.4 石蜡切片及相关染色第27-32页
        3.4.1 石蜡标本制备第27-28页
        3.4.2 石蜡切片第28-29页
        3.4.3 PAS染色第29-30页
        3.4.4 原位末端转移酶标记技术(TUNEL染色)第30-32页
    3.5 冰冻切片及免疫荧光染色第32-35页
        3.5.1 冰冻切片第32页
        3.5.2 免疫荧光染色第32-33页
        3.5.3 CD4免疫组织化学染色第33-35页
    3.6 实时荧光定量PCR(Real-time Quantitative PCR)第35-39页
        3.6.1 小鼠角膜总RNA提取第35-37页
        3.6.2 RNA浓度和纯度测定(分光光度计)第37页
        3.6.3 逆转录第37-38页
        3.6.4 Real-time PCR第38-39页
        3.6.5 数据分析第39页
    3.7 炎症因子蛋白质水平检测(ELISA法)第39-40页
    3.8 Westert blot免疫印迹分析第40-45页
        3.8.1 蛋白提取及定量第40-42页
        3.8.2 Western blot免疫印迹分析第42-45页
    3.9 统计分析第45-46页
第四章 实验结果第46-62页
    4.1 基础泪液分泌量测定实验结果第46页
    4.2 眼表OGD染色结果第46-48页
    4.3 小鼠结膜杯状细胞数量的变化第48-49页
    4.4 角膜上皮屏障功能检测结果第49-52页
    4.5 角结膜组织中Caspase表达情况第52-55页
    4.6 角结膜组织中TUNEL染色情况第55-56页
    4.7 结膜CD4染色情况第56-58页
    4.8 结膜组织中炎症因子的表达情况第58-60页
    4.9 丹皮酚的抗炎机制探究第60-62页
第五章 讨论第62-65页
第六章 结论第65-66页
附录 中英文对照表第66-67页
参考文献第67-76页
致谢第76-78页
在学期间主要科研成果第78页

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