| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1 绪论 | 第9-13页 |
| 1.1 咪唑乙烟酸概述 | 第9页 |
| 1.2 咪唑乙烟酸降解菌的研究概况 | 第9页 |
| 1.3 土壤微生物多样性概述 | 第9-11页 |
| 1.3.1 微生物平板培养法的研究概况 | 第10页 |
| 1.3.2 高通量测序技术的研究概况 | 第10-11页 |
| 1.4 研究意义 | 第11-13页 |
| 2 降解菌的鉴定及降解效能评价 | 第13-24页 |
| 2.1 试验材料 | 第13页 |
| 2.1.1 试验仪器设备 | 第13页 |
| 2.1.2 培养基 | 第13页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第13页 |
| 2.1.4 试验用品 | 第13页 |
| 2.1.5 菌株来源 | 第13页 |
| 2.2 试验方法 | 第13-15页 |
| 2.2.1 高效降解菌的鉴定 | 第13-14页 |
| 2.2.2 咪唑乙烟酸作为唯一碳源的细菌培养 | 第14页 |
| 2.2.3 菌液中咪唑乙烟酸的提取 | 第14页 |
| 2.2.4 液相色谱检测条件 | 第14页 |
| 2.2.5 高效降解菌最适培养时间 | 第14页 |
| 2.2.6 咪唑乙烟酸浓度对降解菌降解率的影响 | 第14页 |
| 2.2.7 温度对降解菌降解率的影响 | 第14-15页 |
| 2.2.8 pH对降解菌降解率的影响 | 第15页 |
| 2.3 试验结果 | 第15-24页 |
| 2.3.1 高效降解菌鉴定结果 | 第15-17页 |
| 2.3.2 水样中咪唑乙烟酸的标准曲线 | 第17页 |
| 2.3.3 水样中咪唑乙烟酸的添加回收率 | 第17-18页 |
| 2.3.4 高效降解菌P2、D1最适培养时间 | 第18-19页 |
| 2.3.5 咪唑乙烟酸浓度对降解菌P2、D1降解率的影响 | 第19-21页 |
| 2.3.6 温度对降解菌P2、D1降解率的影响 | 第21-22页 |
| 2.3.7 pH对降解菌P2、D1降解率的影响 | 第22-24页 |
| 3 盆栽试验 | 第24-67页 |
| 3.1 试验材料 | 第24页 |
| 3.1.1 试验仪器设备 | 第24页 |
| 3.1.2 培养基 | 第24页 |
| 3.1.3 试验试剂 | 第24页 |
| 3.1.4 试验用品 | 第24页 |
| 3.2 试验方法 | 第24-26页 |
| 3.2.1 降解菌作为降解菌的盆栽试验 | 第24-25页 |
| 3.2.2 土壤真菌、细菌的分离、纯化及计数 | 第25-26页 |
| 3.2.3 土壤真菌、细菌的鉴定 | 第26页 |
| 3.2.4 土壤中咪唑乙烟酸残留的测定 | 第26页 |
| 3.2.5 基于高通量技术盆栽试验土壤微生物多样性及相关分析 | 第26页 |
| 3.3 试验结果 | 第26-67页 |
| 3.3.1 咪唑乙烟酸在甲醇中的标准曲线 | 第26-27页 |
| 3.3.2 短密木霉、大豆和咪唑乙烟酸对土壤微生物多样性及咪唑乙烟酸残留的影响 | 第27-31页 |
| 3.3.3 基于高通量技术短密木霉作为降解菌的盆栽试验土壤微生物多样性分析 | 第31-40页 |
| 3.3.4 粪产碱菌、大豆和咪唑乙烟酸对土壤微生物多样性及咪唑乙烟酸残留的影响 | 第40-45页 |
| 3.3.5 基于高通量技术粪产碱菌作为降解菌的盆栽试验土壤微生物多样性分析 | 第45-54页 |
| 3.3.6 粘质沙雷氏菌、大豆和咪唑乙烟酸对土壤微生物多样性及咪唑乙烟酸残留的影响 | 第54-58页 |
| 3.3.7 基于高通量技术粘质沙雷氏菌作为降解菌的盆栽试验土壤微生物多样性分析 | 第58-67页 |
| 4 结论与讨论 | 第67-69页 |
| 4.1 高效降解细菌的最适降解条件 | 第67页 |
| 4.2 短密木霉作为降解菌的盆栽试验 | 第67页 |
| 4.3 粪产碱菌、粘质沙雷氏菌作为降解菌的盆栽试验 | 第67-69页 |
| 参考文献 | 第69-74页 |
| 附录 | 第74-76页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第76-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
