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SBA-15固定化脂肪酶催化合成棕榈酸乙酯的研究

摘要第4-6页
Abstract第6-7页
第一章 前言第14-28页
    1.1 介孔分子筛简介第14-18页
        1.1.1 SBA 系列介孔材料简介第15-16页
        1.1.2 介孔分子筛的优点第16页
        1.1.3 介孔分子筛的表面修饰第16-17页
        1.1.4 介孔分子筛的应用研究进展第17-18页
    1.2 脂肪酶简介第18-24页
        1.2.1 脂肪酶第18页
        1.2.2 游离脂肪酶的缺点第18-19页
        1.2.3 固定化酶优点第19页
        1.2.4 制备固定化酶的方法第19-21页
        1.2.5 固定化载体第21-22页
        1.2.6 固定化酶的性质变化第22-23页
        1.2.7 介孔分子筛固定化酶的研究第23-24页
        1.2.8 非水相中酶催化的特征第24页
    1.3 酶法合成棕榈酸乙酯第24-26页
        1.3.1 酶法合成酯类的研究进展第24-25页
        1.3.2 棕榈酸乙酯简介第25页
        1.3.3 棕榈酸乙酯的用途第25-26页
        1.3.4 传统棕榈酸乙酯的合成方法第26页
        1.3.5 酶法合成棕榈酸乙酯的优点第26页
    1.4 立题依据及意义第26-28页
第二章 有序介孔材料 SBA-15 的合成、修饰及表征第28-39页
    2.1 引文第28页
    2.2 实验部分第28-32页
        2.2.1 实验试剂与仪器第28-29页
            2.2.1.1 实验仪器第28-29页
            2.2.1.2 实验试剂第29页
        2.2.2 有序介孔材料 SBA-15 的合成第29-30页
        2.2.3 有序介孔材料 SBA-15 的修饰第30页
        2.2.4 SBA-15 及 NH2-SBA-15 的结构表征分析第30-32页
            2.2.4.1 XRD第30页
            2.2.4.2 红外光谱(FT-IR)分析第30-31页
            2.2.4.3 扫描电镜(SEM)测试第31页
            2.2.4.4 透射电镜(TEM)测试第31页
            2.2.4.5 N2物理吸附-脱附第31页
            2.2.4.6 TG-DTA 分析第31-32页
    2.3 实验结果与分析第32-38页
        2.3.1 XRD 分析第32-33页
        2.3.2 FT-IR 分析第33-34页
        2.3.3 SEM 分析第34-35页
        2.3.4 TEM 分析第35页
        2.3.5 N2吸附-脱附等温曲线分析第35-37页
        2.3.6 TG-DTA 分析第37-38页
    2.4 本章小结第38-39页
第三章 有序介孔材料 SBA-15 中 PPL 的固定化及其催化活性第39-62页
    3.1 引文第39页
    3.2 实验部分第39-46页
        3.2.1 实验试剂与仪器第39-41页
            3.2.1.1 实验仪器第39页
            3.2.1.2 实验试剂第39-40页
            3.2.1.3 实验试剂的配制第40-41页
        3.2.2 利用 NH2-SBA-15 共价交联法固定化脂肪酶第41-42页
            3.2.2.1 交联时间第42页
            3.2.2.2 加酶量第42页
            3.2.2.3 缓冲液 pH第42页
            3.2.2.4 温度第42页
        3.2.3 利用 SBA-15 物理吸附法固定化脂肪酶第42页
        3.2.4 酶的活性测定第42-43页
        3.2.5 酶固定量测定第43-45页
            3.2.5.1 考马斯亮蓝法的原理第43-44页
            3.2.5.2 考马斯亮蓝液的配制方法第44页
            3.2.5.3 标准溶液的配制第44页
            3.2.5.4 蛋白质标准曲线的制作第44页
            3.2.5.5 待测样品中蛋白质含量的测定:第44-45页
        3.2.6 固定化酶性质研究第45-46页
            3.2.6.1 固定化酶和游离酶的最适温度测定第45页
            3.2.6.2 固定化酶和游离酶的最适 PH 测定第45页
            3.2.6.3 固定化酶和游离酶的 Km 值测定第45-46页
        3.2.7 固定化酶的稳定性质研究第46页
            3.2.7.1 热稳定性第46页
            3.2.7.2 pH 值稳定性第46页
            3.2.7.3 储藏稳定性第46页
            3.2.7.4 操作稳定性第46页
    3.3 实验结果与分析第46-60页
        3.3.1 交联法固定化脂肪酶的方法测定第46-51页
            3.3.1.1 交联时间第46-48页
            3.3.1.2 加酶量第48-49页
            3.3.1.3 缓冲液 pH第49-50页
            3.3.1.4 温度第50-51页
        3.3.2 酶固定量结果第51-52页
        3.3.3 固定化酶性质研究第52-54页
            3.3.3.1 最适温度第52-53页
            3.3.3.2 最适 pH第53-54页
            3.3.3.3 km 值第54页
        3.3.4 固定化酶的稳定性研究第54-57页
            3.3.4.1 热稳定性第54-55页
            3.3.4.2 pH 稳定性第55-56页
            3.3.4.3 储藏稳定性第56页
            3.3.4.4 操作稳定性第56-57页
        3.3.5 固定化酶的结构表征第57-60页
            3.3.5.1 红外光谱第57-58页
            3.3.5.2 氮气吸附第58-60页
    3.4 本章小结第60-62页
第四章 酶法制备棕榈酸乙酯的工艺研究第62-78页
    4.1 引文第62页
    4.2 实验部分第62-65页
        4.2.1 实验试剂与仪器第62-63页
            4.2.1.1 实验仪器第62页
            4.2.1.2 实验试剂第62-63页
        4.2.2 棕榈酸乙酯的制备第63页
        4.2.3 棕榈酸乙酯含量的测定第63-64页
        4.2.4 棕榈酸乙酯的纯化第64页
        4.2.5 棕榈酸乙酯的表征第64页
            4.2.5.1 紫外全波长第64页
            4.2.5.2 红外光谱第64页
        4.2.6 反应条件单因素实验第64页
        4.2.7 响应面实验设计第64-65页
    4.3 实验结果与分析第65-76页
        4.3.1 棕榈酸乙酯的表征第65-67页
            4.3.1.1 紫外全波长第65-66页
            4.3.1.2 红外光谱第66-67页
        4.3.2 单因素实验结果分析第67-72页
            4.3.2.1 加酶量第67-68页
            4.3.2.2 反应时间第68-69页
            4.3.2.3 反应温度第69-70页
            4.3.2.4 乙醇浓度第70-71页
            4.3.2.5 加水量第71-72页
        4.3.3 响应面试验优化固定化酶制备棕榈酸乙酯的反应条件第72-76页
            4.3.3.1 响应面实验结果第72-75页
            4.3.3.2 模型评价第75-76页
            4.3.3.3 最优解决方案第76页
    4.4 本章小结第76-78页
第五章 总结与展望第78-81页
    5.1 总结第78-79页
    5.2 创新之处第79页
    5.3 展望第79-81页
参考文献第81-95页
致谢第95页

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