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极低频电磁场对MSCs的作用及其机制研究

摘要第4-6页
Abstract第6-8页
缩略词表第12-14页
前言第14-19页
第一章 检测ELF对脐带MSCs生长状况及免疫特性的影响第19-36页
    1.1 引言第19页
    1.2 实验材料第19-21页
        1.2.1 实验对象第19-20页
        1.2.2 主要试剂第20页
        1.2.3 主要仪器设备第20-21页
    1.3 实验方法第21-27页
        1.3.1 脐带MSCs的获取第21页
        1.3.2 磁场处理MSCs第21-22页
        1.3.3 细胞形态的观察及免疫荧光标记法检测细胞骨架第22-23页
        1.3.4 流式细胞仪检测MSCs表面标志的变化第23-24页
        1.3.5 细胞周期的检测第24页
        1.3.6 Annexin V/PI双染法检测细胞凋亡第24-25页
        1.3.7 CCK-8法检测细胞活力第25页
        1.3.8 Real-time PCR检测MSCs分泌的细胞因子的变化第25-27页
        1.3.9 数据统计分析第27页
    1.4 实验结果与分析第27-34页
        1.4.1 成功获取脐带来源MSCs第27-29页
        1.4.2 ELF对MSCs细胞形态及细胞骨架没有影响第29-30页
        1.4.3 ELF对MSCs表面标志没有影响第30-31页
        1.4.4 ELF对MSCs细胞周期没有影响第31-32页
        1.4.5 ELF对MSCs细胞凋亡没有影响第32-33页
        1.4.6 ELF对MSCs细胞活力没有影响第33-34页
        1.4.7 ELF对MSCs免疫调节功能没有影响第34页
    1.5 讨论第34-36页
第二章 ELF对脐带MSCs成骨成脂诱导分化的影响第36-49页
    2.1 引言第36-37页
    2.2 实验材料第37-38页
        2.2.1 实验对象第37页
        2.2.2 主要试剂第37-38页
        2.2.3 主要仪器设备第38页
    2.3 实验方法第38-44页
        2.3.1 脐带来源间充质干细胞的分离及纯化第38-39页
        2.3.2 脐带来源间充质干细胞的成骨成脂分化的诱导第39-40页
        2.3.3 暴磁处理第40页
        2.3.4 染色法检测MSCs的成骨成脂诱导分化第40页
        2.3.5 Q-PCR检测成骨成脂诱导相关基因的表达第40-42页
        2.3.6 细胞免疫荧光检测成脂诱导相关蛋白PPARγ2的表达第42-43页
        2.3.7 Western blot检测蛋白表达第43-44页
    2.4 实验结果与分析第44-48页
        2.4.1 Alizarin Red S染色法和Oil Red O染色法显示ELF对MSCs成骨分化无影响,但能够抑制MSCs的成脂分化第44-45页
        2.4.2 ELF对成骨分化的关键基因的表达无影响,但能抑制成脂分化关键基因的表达第45-46页
        2.4.3 ELF抑制MSCs成脂分化关键分子PPARγ2的蛋白表达第46-47页
        2.4.4 ELF抑制MSCs成脂分化的机制第47-48页
    2.5 讨论第48-49页
结论第49-50页
参考文献第50-56页
附录第56-59页
硕士期间科研成果第59-60页
致谢第60-61页

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