| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-48页 |
| 1.1 寄生植物概况 | 第14-18页 |
| 1.1.1 寄生植物的分类 | 第14页 |
| 1.1.2 我国常见的寄生植物种类及其分布 | 第14-18页 |
| 1.2 独脚金属寄生植物的危害和防治现状 | 第18-22页 |
| 1.2.1 独脚金属植物的危害 | 第18-19页 |
| 1.2.2 独脚金属植物的萌发机制 | 第19-21页 |
| 1.2.3 独脚金属植物的传统防治方法 | 第21-22页 |
| 1.3“Push-Pull technology”防治策略 | 第22-24页 |
| 1.4 山蚂蝗属植物研究概况 | 第24-37页 |
| 1.4.1 山蚂蝗属植物化学成分研究概况 | 第24-36页 |
| 1.4.2 山蚂蝗属植物的应用 | 第36-37页 |
| 1.5 黄酮碳苷的生物活性 | 第37-43页 |
| 1.5.1 抗氧化活性 | 第38-39页 |
| 1.5.2 抗细菌活性 | 第39页 |
| 1.5.3 动物生理学活性 | 第39-41页 |
| 1.5.4 杀虫活性 | 第41页 |
| 1.5.5 作为信号传导物质 | 第41-43页 |
| 1.6 黄酮碳苷的合成方法 | 第43-45页 |
| 1.6.1 黄酮碳苷的化学合成 | 第43-44页 |
| 1.6.2 黄酮碳苷的生物合成 | 第44-45页 |
| 1.7 本研究的目的及意义 | 第45-48页 |
| 第二章 实验材料 | 第48-50页 |
| 2.1 实验主要仪器 | 第48页 |
| 2.2 实验药品 | 第48-50页 |
| 第三章 山蚂蝗属植物D.incanum根系分泌中黄酮双碳苷的鉴定 | 第50-62页 |
| 3.1 前言 | 第50-51页 |
| 3.2 D.incanum种子的培养 | 第51-52页 |
| 3.2.1 D.incanum种子的预培养 | 第51页 |
| 3.2.2 D.incanum的水培养 | 第51-52页 |
| 3.3 D.incanum根系分泌物收集和分析 | 第52-53页 |
| 3.3.1 D.incanum根系分泌物收集 | 第52页 |
| 3.3.2 D.incanum根系分泌物中黄酮碳苷的HPLC分析方法 | 第52页 |
| 3.3.3 D.incanum根系分泌物中黄酮碳苷的LCMS分析方法 | 第52-53页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第53-61页 |
| 3.4.1 黄酮双碳苷HPLC的鉴定 | 第53-54页 |
| 3.4.2 黄酮双碳苷LCMS的鉴定 | 第54-61页 |
| 3.5 小结 | 第61-62页 |
| 第四章 带有同位素标记的 2-羟基柚皮素及其衍生物的合成 | 第62-74页 |
| 4.1 前言 | 第62-68页 |
| 4.2 实验内容及方法 | 第68-71页 |
| 4.2.1 2-羟基-4,6-二苄基乙酰基苯的合成 | 第68-70页 |
| 4.2.2 带有同位素标记的 2-羟基柚皮素及其衍生物的合成 | 第70-71页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第71-73页 |
| 4.4 小结 | 第73-74页 |
| 第五章D.incanum中黄酮碳苷的生物合成途径研究 | 第74-80页 |
| 5.1 前言 | 第74页 |
| 5.2 D.incanum粗酶的提取 | 第74-75页 |
| 5.3 D.incanum粗酶催化合成黄酮碳苷 | 第75-76页 |
| 5.3.1 实验内容 | 第75页 |
| 5.3.2 实验方法 | 第75-76页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第76-78页 |
| 5.4.1 以 2-羟基柚皮素为底物的第一步糖基化反应 | 第76-78页 |
| 5.4.2 UDP-glucose和UDP-galactose的可能互变原因 | 第78页 |
| 5.5 小结 | 第78-80页 |
| 第六章D.incanum中黄酮双碳苷的生物合成途径研究 | 第80-98页 |
| 6.1 前言 | 第80页 |
| 6.2 OSCGT催化合成 2-羟基柚皮素葡萄糖碳苷 | 第80-82页 |
| 6.2.1 大肠杆菌（E.coli）的培养 | 第80页 |
| 6.2.2 OsCGT的纯化 | 第80-81页 |
| 6.2.3 OsCGT的检测 | 第81-82页 |
| 6.2.4 OsCGT的底物专一性测试 | 第82页 |
| 6.2.5 2-羟基柚皮素葡萄糖苷的合成 | 第82页 |
| 6.3 D.incanum中黄酮双碳苷的生物合成 | 第82-83页 |
| 6.3.1 实验内容 | 第82页 |
| 6.3.2 实验方法 | 第82-83页 |
| 6.4 UDP-glucose与UDP-galactose间的相互转化的可能性验证 | 第83-84页 |
| 6.4.1 黄酮双碳苷互变的实验 | 第84页 |
| 6.4.2 D.incanum粗酶中UDP-sugar的检测 | 第84页 |
| 6.4.3 UDP-glucose和UDP-galactose的互变实验 | 第84页 |
| 6.5 结果与讨论 | 第84-95页 |
| 6.5.1 以 2-羟基柚皮素为底物OsCGT催化的糖基化反应 | 第84-86页 |
| 6.5.2 以 2-羟基柚皮素葡萄糖碳苷为底物的第二步糖基化反应 | 第86-93页 |
| 6.5.3 UDP-glucose和UDP-galactose的可能互变机制 | 第93-95页 |
| 6.6 小结 | 第95-98页 |
| 第七章 OSCGT对 2-羟基柚皮素衍生物底物的专一性及结合位点研究 | 第98-106页 |
| 7.1 前言 | 第98页 |
| 7.2 OSCGT与 2-羟基柚皮素衍生物的糖基化反应 | 第98-99页 |
| 7.2.1 实验内容 | 第98页 |
| 7.2.2 试验方法 | 第98-99页 |
| 7.3 黄酮碳苷的制备 | 第99页 |
| 7.3.1 黄酮碳苷的制备方法 | 第99页 |
| 7.3.2 确定产物结构 | 第99页 |
| 7.4 结果与讨论 | 第99-105页 |
| 7.4.1 糖基化反应活性及结合位点分析 | 第99-103页 |
| 7.4.2 黄酮碳苷类产物的LCMS分析 | 第103-104页 |
| 7.4.3 黄酮碳苷类产物的NMR结构解析 | 第104-105页 |
| 7.5 小结 | 第105-106页 |
| 第八章 D.incanum CGTs对 2-羟基柚皮素衍生物底物的专一性及结合位点研究 | 第106-116页 |
| 8.1 前言 | 第106页 |
| 8.2 D.incanum CGTs催化合成 2-羟基柚皮素葡萄糖苷衍生物 | 第106-107页 |
| 8.2.1 实验内容 | 第106页 |
| 8.2.2 试验方法 | 第106-107页 |
| 8.2.3 确定糖基连接方式 | 第107页 |
| 8.3 D.incanum CGTs合成 2-羟基柚皮素葡萄糖碳苷衍生物的酶促反应 | 第107页 |
| 8.3.1 OsCGT合成 2-羟基柚皮素葡萄糖碳苷衍生物 | 第107页 |
| 8.3.2 以 2-羟基柚皮素葡萄糖碳苷衍生物为底物的第二步糖基化反应 | 第107页 |
| 8.4 结果与讨论 | 第107-114页 |
| 8.4.1 第一步糖基化反应活性及结合位点分析 | 第107-110页 |
| 8.4.2 第二步糖基化反应活性分析 | 第110-114页 |
| 8.5 小结 | 第114-116页 |
| 第九章 结论与创新 | 第116-118页 |
| 9.1 研究结论 | 第116页 |
| 9.2 研究的创新点 | 第116-118页 |
| 参考文献 | 第118-128页 |
| 附录 1 | 第128-138页 |
| 附录 2 | 第138-192页 |
| 附录 3 | 第192-214页 |
| 附录 4 | 第214-226页 |
| 缩略词表 | 第226-227页 |
| 致谢 | 第227-228页 |
| 作者简介 | 第228页 |
