| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略词 | 第10-12页 |
| 第1章 绪论 | 第12-27页 |
| 1.1 F-box基因家族 | 第12-14页 |
| 1.1.1 F-box蛋白的结构 | 第12-13页 |
| 1.1.2 F-box蛋白与泛素蛋白酶体途径 | 第13-14页 |
| 1.2 F-box蛋白在植物生长发育中的功能 | 第14-18页 |
| 1.2.1 F-box蛋白参与植物激素信号转导 | 第14-17页 |
| 1.2.2 F-box蛋白参与植物光信号转导 | 第17页 |
| 1.2.3 F-box蛋白参与花器官发育 | 第17-18页 |
| 1.2.4 F-box蛋白参与植物自交不亲和 | 第18页 |
| 1.2.5 F-box蛋白参与植物其他发育过程 | 第18页 |
| 1.3 光受体及光形态建成 | 第18-20页 |
| 1.3.1 光受体的作用机制 | 第19-20页 |
| 1.3.2 光形态建成的作用机制 | 第20页 |
| 1.4 FOF2生物信息学分析 | 第20-25页 |
| 1.4.1 FOF2蛋白的F-box结构域分析 | 第21页 |
| 1.4.2 FOF2基因的转录调控区域元件分析 | 第21-22页 |
| 1.4.3 FOF2蛋白的信号肽序列分析 | 第22-23页 |
| 1.4.4 FOF2蛋白跨膜结构域预测 | 第23页 |
| 1.4.5 FOF2蛋白基本理化性质和亲疏水性分析 | 第23-25页 |
| 1.5 本论文研究目的、意义与内容 | 第25-27页 |
| 第2章 FOF2基因表达的光调控研究 | 第27-39页 |
| 2.1 实验材料、仪器和试剂 | 第27-29页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第27页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第27页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第27-28页 |
| 2.1.4 实验溶液配置 | 第28-29页 |
| 2.2 实验方法 | 第29-32页 |
| 2.2.1 拟南芥培养条件 | 第29页 |
| 2.2.2 种子灭菌与播种 | 第29页 |
| 2.2.3 光处理 | 第29-30页 |
| 2.2.4 拟南芥植株总RNA提取及逆转录 | 第30页 |
| 2.2.5 实时荧光定量PCR | 第30-31页 |
| 2.2.6 植物总DNA提取 | 第31页 |
| 2.2.7 Western杂交 | 第31-32页 |
| 2.3 实验结果与分析 | 第32-38页 |
| 2.3.1 FOF2基因过表达转基因株系的分子鉴定 | 第32页 |
| 2.3.2 光对FOF2基因转录水平的影响 | 第32-34页 |
| 2.3.3 光对FOF2蛋白水平的调节 | 第34-38页 |
| 2.4 小结 | 第38-39页 |
| 第3章 FOF2在拟南芥生长发育中的功能研究 | 第39-49页 |
| 3.1 实验材料与试剂 | 第39页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第39页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第39页 |
| 3.2 实验方法 | 第39-41页 |
| 3.2.1 植物种子的灭菌与播种 | 第39页 |
| 3.2.2 种子的土壤种植 | 第39页 |
| 3.2.3 拟南芥叶片系数测定 | 第39-40页 |
| 3.2.4 不同发育时期植株的获取 | 第40页 |
| 3.2.5 拟南芥下胚轴长度测定 | 第40页 |
| 3.2.6 RNA提取及实时荧光定量PCR | 第40页 |
| 3.2.7 PCR反应 | 第40-41页 |
| 3.3 实验结果与分析 | 第41-48页 |
| 3.3.1 FOF2基因T-DNA插入突变体分子鉴定 | 第41-42页 |
| 3.3.2 FOF2过量表达或者缺失对拟南芥下胚轴伸长的影响 | 第42-43页 |
| 3.3.3 FOF2基因的组织特异性表达分析 | 第43-44页 |
| 3.3.4 FOF2过量表达或者缺失对拟南芥生长发育的影响 | 第44-46页 |
| 3.3.5 FOF2基因调控开花的分子机理分析 | 第46-48页 |
| 3.4 小结 | 第48-49页 |
| 结论 | 第49-51页 |
| 参考文献 | 第51-58页 |
| 附录A 攻读学位期间所发表的学术论文目录 | 第58-59页 |
| 致谢 | 第59页 |
