摘要 | 第5-8页 |
Abstract | 第8-10页 |
第1章 引言 | 第17-49页 |
1.1 研究背景 | 第17页 |
1.2 漆酶 | 第17-34页 |
1.2.1 漆酶结构 | 第18-20页 |
1.2.2 漆酶催化机制 | 第20-24页 |
1.2.2.1 漆酶催化反应机理 | 第20-22页 |
1.2.2.2 漆酶介体系统 | 第22-24页 |
1.2.3 漆酶生物合成及分泌 | 第24-26页 |
1.2.3.1 漆酶生物合成 | 第24-25页 |
1.2.3.2 漆酶分泌 | 第25-26页 |
1.2.4 漆酶生产 | 第26-29页 |
1.2.4.1 漆酶发酵条件优化 | 第26-27页 |
1.2.4.2 诱导剂对漆酶生产的影响 | 第27-28页 |
1.2.4.3 漆酶基因异源表达 | 第28-29页 |
1.2.5 漆酶固定化 | 第29-30页 |
1.2.6 漆酶应用 | 第30-34页 |
1.2.6.1 环境保护 | 第30-31页 |
1.2.6.2 纺织工业 | 第31-32页 |
1.2.6.3 生物检测 | 第32-33页 |
1.2.6.4 有机合成 | 第33页 |
1.2.6.5 造纸和食品等行业 | 第33-34页 |
1.2.7 生物质平台化合物高值转化 | 第34页 |
1.3 云芝多糖 | 第34-42页 |
1.3.1 胞外多糖 | 第36页 |
1.3.2 胞内糖肽 | 第36-37页 |
1.3.3 多糖生物合成 | 第37-38页 |
1.3.4 云芝多糖生产及制备 | 第38-40页 |
1.3.5 云芝多糖应用 | 第40-42页 |
1.3.5.1 抗肿瘤作用 | 第40页 |
1.3.5.2 抗氧化作用 | 第40-41页 |
1.3.5.3 抗病毒作用 | 第41页 |
1.3.5.4 免疫调节作用 | 第41页 |
1.3.5.5 其它作用 | 第41-42页 |
1.4 真菌群体感应信号分子 | 第42-47页 |
1.4.1 法尼醇 | 第44-47页 |
1.4.2 酪醇 | 第47页 |
1.5 论文研究思路及研究内容 | 第47-49页 |
第2章 香草酸促进变色栓菌发酵产漆酶 | 第49-67页 |
2.1 研究背景 | 第49页 |
2.2 材料与方法 | 第49-54页 |
2.2.1 实验材料与设备 | 第49-50页 |
2.2.2 实验方法 | 第50-52页 |
2.2.2.1 变色栓菌培养方法 | 第50-51页 |
2.2.2.2 香草酸添加实验 | 第51-52页 |
2.2.3 分析方法 | 第52-53页 |
2.2.3.1 生物量测定 | 第52页 |
2.2.3.2 漆酶活性测定 | 第52页 |
2.2.3.3 蛋白质浓度测定 | 第52-53页 |
2.2.4 磁性漆酶催化剂制备 | 第53页 |
2.2.5 HMF催化氧化 | 第53-54页 |
2.3 结果与讨论 | 第54-66页 |
2.3.1 香草酸处理对变色栓菌漆酶产量的影响 | 第54-56页 |
2.3.2 5 L搅拌式发酵罐放大培养 | 第56-57页 |
2.3.3 磁性漆酶催化剂制备及HMF催化氧化 | 第57-66页 |
2.4 小结 | 第66-67页 |
第3章 法尼醇促进变色栓菌发酵产漆酶 | 第67-87页 |
3.1 研究背景 | 第67页 |
3.2 材料与方法 | 第67-73页 |
3.2.1 实验材料与设备 | 第67-68页 |
3.2.2 实验方法 | 第68-69页 |
3.2.2.1 变色栓菌培养方法 | 第68页 |
3.2.2.2 法尼醇诱导实验 | 第68-69页 |
3.2.3 分析方法 | 第69-73页 |
3.2.3.1 生物量测定 | 第69页 |
3.2.3.2 漆酶活性测定 | 第69页 |
3.2.3.3 蛋白质浓度测定 | 第69页 |
3.2.3.4 SDS-PAGE蛋白电泳 | 第69页 |
3.2.3.5 Native-PAGE蛋白电泳 | 第69页 |
3.2.3.6 胞内漆酶活性测定 | 第69-70页 |
3.2.3.7 胞内ROS和GSSG含量测定 | 第70页 |
3.2.3.8 菌丝形态观察 | 第70页 |
3.2.3.9 实时定量PCR | 第70-73页 |
3.3 结果与讨论 | 第73-84页 |
3.3.1 法尼醇对变色栓菌漆酶产量的影响 | 第73-76页 |
3.3.2 法尼醇对变色栓菌细胞生长和菌丝形态的影响 | 第76-80页 |
3.3.3 法尼醇刺激漆酶生物合成和菌丝形态变化的机理初探 | 第80-83页 |
3.3.4 5L搅拌式发酵罐放大培养 | 第83-84页 |
3.4 小结 | 第84-87页 |
第4章 法尼醇促进变色栓菌发酵产胞外多糖 | 第87-109页 |
4.1 研究背景 | 第87页 |
4.2 材料与方法 | 第87-93页 |
4.2.1 实验材料与设备 | 第87-88页 |
4.2.2 实验方法 | 第88-89页 |
4.2.2.1 变色栓菌培养方法 | 第88-89页 |
4.2.2.2 法尼醇诱导实验 | 第89页 |
4.2.2.3 胞外多糖的提取和纯化 | 第89页 |
4.2.3 分析方法 | 第89-93页 |
4.2.3.1 生物量测定 | 第89页 |
4.2.3.2 胞内ROS含量测定 | 第89-90页 |
4.2.3.3 菌丝形态观察 | 第90页 |
4.2.3.4 菌球孔隙率测定 | 第90页 |
4.2.3.5 胞外多糖的总碳水化合物和糖醛酸含量测定 | 第90页 |
4.2.3.6 胞外多糖的分子量和分子量分布测定 | 第90-91页 |
4.2.3.7 胞外多糖的单糖组成分析 | 第91页 |
4.2.3.8 胞外多糖的傅里叶变换红外光谱(FTIR) | 第91页 |
4.2.3.9 胞外多糖的抗氧化活性分析 | 第91-92页 |
4.2.3.10 胞外多糖的抗肿瘤活性分析 | 第92-93页 |
4.3 结果与讨论 | 第93-106页 |
4.3.1 法尼醇对变色栓菌胞外多糖产量的影响 | 第93-99页 |
4.3.2 法尼醇对变色栓菌胞外多糖理化性质的影响 | 第99-102页 |
4.3.3 EPS-F和EPS-C的抗氧化活性 | 第102-104页 |
4.3.4 EPS-F和EPS-C的抗肿瘤活性 | 第104-106页 |
4.4 小结 | 第106-109页 |
第5章 酪醇促进变色栓菌发酵产胞内糖肽 | 第109-125页 |
5.1 研究背景 | 第109页 |
5.2 材料与方法 | 第109-112页 |
5.2.1 实验材料与设备 | 第109-110页 |
5.2.2 实验方法 | 第110-111页 |
5.2.2.1 变色栓菌培养方法 | 第110页 |
5.2.2.2 酪醇诱导实验 | 第110页 |
5.2.2.3 胞内糖肽的提取和纯化 | 第110-111页 |
5.2.3 分析方法 | 第111-112页 |
5.2.3.1 生物量测定 | 第111页 |
5.2.3.2 胞内ATP含量测定 | 第111页 |
5.2.3.3 PDA平板培养 | 第111页 |
5.2.3.4 胞内糖肽的总碳水化合物和蛋白含量测定 | 第111页 |
5.2.3.5 胞内糖肽的分子量和分子量分布测定 | 第111-112页 |
5.2.3.6 胞内糖肽的单糖组成分析 | 第112页 |
5.2.3.7 胞内糖肽的氨基酸组成分析 | 第112页 |
5.2.3.8 胞内糖肽的傅里叶变换红外光谱(FTIR) | 第112页 |
5.2.3.9 胞内糖肽的抗肿瘤活性分析 | 第112页 |
5.3 结果与讨论 | 第112-123页 |
5.3.1 酪醇对变色栓菌胞内糖肽产量的影响 | 第112-116页 |
5.3.2 酪醇对变色栓菌胞内糖肽理化性质的影响 | 第116-120页 |
5.3.3 IPS-T和IPS-C的抗肿瘤活性 | 第120-123页 |
5.4 小结 | 第123-125页 |
第6章 结论与展望 | 第125-127页 |
6.1 结论 | 第125-126页 |
6.2 创新点 | 第126页 |
6.3 展望 | 第126-127页 |
符号表 | 第127-129页 |
参考文献 | 第129-153页 |
附录A | 第153-161页 |
A.1 BSA标准曲线 | 第153页 |
A.2 HMF标准曲线 | 第153-154页 |
A.3 FFCA标准曲线 | 第154页 |
A.4 FDCA标准曲线 | 第154页 |
A.5 HMF氧化反应的液相色谱图 | 第154-156页 |
A.6 漆酶基因序列 | 第156-161页 |
个人简历及发表文章目录 | 第161-163页 |
致谢 | 第163-164页 |