| 中文摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 目录 | 第10-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-23页 |
| 1.1 干细胞 | 第13-14页 |
| 1.1.1 干细胞定义及其分类 | 第13页 |
| 1.1.2 干细胞的应用 | 第13-14页 |
| 1.1.3 干细胞对称与不对称分裂 | 第14页 |
| 1.2 肿瘤干细胞 | 第14-21页 |
| 1.2.1 肿瘤干细胞假说 | 第14页 |
| 1.2.2 肿瘤干细胞起源 | 第14-15页 |
| 1.2.3 肿瘤干细胞的存在 | 第15-16页 |
| 1.2.4 CSC的分离鉴定 | 第16-17页 |
| 1.2.4.1 利用肿瘤干细胞表面标志物分选 | 第16页 |
| 1.2.4.2 SP分选法 | 第16-17页 |
| 1.2.4.3 醛脱氢酶分选法 | 第17页 |
| 1.2.4.4 根据集落形成能力进行分选或鉴定 | 第17页 |
| 1.2.4.5 根据体内致瘤能力进行分选 | 第17页 |
| 1.2.4.6 根据非黏附球囊培养分选法 | 第17页 |
| 1.2.5 CSC与肿瘤 | 第17-21页 |
| 1.2.5.1 CSC与肿瘤的发生模型 | 第17-19页 |
| 1.2.5.2 CSC与肿瘤转移研究 | 第19-20页 |
| 1.2.5.3 CSC与肿瘤的治疗 | 第20-21页 |
| 1.3 BMSCs与肿瘤关系 | 第21-23页 |
| 1.3.1 BMSCs的定义 | 第21页 |
| 1.3.2 BMSCs可转化为肿瘤 | 第21-22页 |
| 1.3.3 BMSCs对肿瘤的影响 | 第22页 |
| 1.3.4 BMSCs与肿瘤治疗 | 第22-23页 |
| 第二章 大鼠骨髓间充质干细胞的分离培养 | 第23-29页 |
| 2.1 前言 | 第23页 |
| 2.2 材料与仪器 | 第23-24页 |
| 2.2.1 实验动物 | 第23页 |
| 2.2.2 主要仪器 | 第23页 |
| 2.2.3 仪器耗材 | 第23-24页 |
| 2.2.4 主要试剂及配制 | 第24页 |
| 2.3 方法 | 第24-25页 |
| 2.3.1 大鼠骨髓间充质干细胞的分离 | 第24-25页 |
| 2.3.2 BMSCs的培养 | 第25页 |
| 2.3.3 BMSCs瑞士-吉姆萨染色 | 第25页 |
| 2.4 结果分析 | 第25-27页 |
| 2.4.1 BMSCs的原代培养 | 第25-26页 |
| 2.4.2 BMSCs的传代培养 | 第26-27页 |
| 2.5 讨论 | 第27-29页 |
| 第三章 大鼠骨髓间充质干细胞向成骨、神经细胞诱导 | 第29-38页 |
| 3.1 前言 | 第29页 |
| 3.2 材料 | 第29-31页 |
| 3.2.1 主要试剂及配制 | 第29-31页 |
| 3.2.1.1 成骨细胞诱导主要试剂 | 第29-30页 |
| 3.2.1.2 神经细胞诱导主要试剂 | 第30-31页 |
| 3.3 方法 | 第31-32页 |
| 3.3.1 大鼠骨髓间充质干细胞(BMSCs)的分离培养及纯化 | 第31页 |
| 3.3.2 细胞诱导分化 | 第31-32页 |
| 3.3.2.1 成骨细胞分化 | 第31-32页 |
| 3.3.2.2 神经细胞分化 | 第32页 |
| 3.4 结果分析 | 第32-36页 |
| 3.4.1 成骨细胞分化 | 第32-35页 |
| 3.4.1.1 诱导成骨细胞形态学观察 | 第32-33页 |
| 3.4.1.2 碱性磷酸酶组织化学染色 | 第33-34页 |
| 3.4.1.3 细胞矿化作用 | 第34-35页 |
| 3.4.2 神经细胞分化 | 第35-36页 |
| 3.4.2.1 诱导神经细胞形态学观察 | 第35页 |
| 3.4.2.2 免疫组化鉴定特定蛋白的表达 | 第35-36页 |
| 3.5 讨论 | 第36-38页 |
| 第四章 干细胞分化阻断与肿瘤发生相关性研究 | 第38-54页 |
| 4.1 前言 | 第38-39页 |
| 4.2 材料与试剂 | 第39页 |
| 4.2.1 实验动物 | 第39页 |
| 4.2.2 主要试剂及其配制 | 第39页 |
| 4.3 方法 | 第39-42页 |
| 4.3.1 BMSCs的分离及其体外扩增 | 第39页 |
| 4.3.2 诱导BMSCs向成骨细胞、神经元样细胞诱导 | 第39页 |
| 4.3.3 中断BMSCs向成骨细胞的分化 | 第39-40页 |
| 4.3.3.1 中断成骨细胞的分化 | 第39-40页 |
| 4.3.3.2 碱性磷酸酶组织化学染色 | 第40页 |
| 4.3.3.3 细胞矿化作用 | 第40页 |
| 4.3.3.4 HE染色 | 第40页 |
| 4.3.4 中断BMSCs向神经元样细胞分化 | 第40-41页 |
| 4.3.4.1 中断神经细胞分化 | 第40页 |
| 4.3.4.2 免疫组化鉴定特定蛋白的表达 | 第40页 |
| 4.3.4.3 HE染色 | 第40-41页 |
| 4.3.5 软琼脂实验 | 第41页 |
| 4.3.6 石蜡切片实验 | 第41-42页 |
| 4.4 结果与分析 | 第42-51页 |
| 4.4.1 成骨细胞观察 | 第42-46页 |
| 4.4.1.1 成骨细胞形态观察 | 第42-44页 |
| 4.4.1.2 碱性磷酸酶组织化学染色 | 第44-45页 |
| 4.4.1.3 细胞矿化作用 | 第45-46页 |
| 4.4.2 神经细胞观察 | 第46-48页 |
| 4.4.2.1 神经细胞形态学观察 | 第46-48页 |
| 4.4.2.2 免疫组化鉴定特定蛋白的表达 | 第48页 |
| 4.4.3 软琼脂实验 | 第48-50页 |
| 4.4.4 石蜡切片实验 | 第50-51页 |
| 4.4.5 克隆细胞培养 | 第51页 |
| 4.5 讨论 | 第51-54页 |
| 结语与展望 | 第54-56页 |
| 参考文献 | 第56-60页 |
| 硕士期间发表的论文 | 第60-61页 |
| 致谢 | 第61页 |