| 致谢 | 第6-7页 |
| 摘要 | 第7-10页 |
| Abstract | 第10-13页 |
| 目录 | 第14-17页 |
| 图目录 | 第17-18页 |
| 表目录 | 第18-19页 |
| 缩略词 | 第19-21页 |
| 第一章 导论 | 第21-24页 |
| 1.1 黄玉B及其在杂交稻生产中的应用 | 第21-22页 |
| 1.2 本研究目的和主要内容 | 第22-24页 |
| 1.2.1 研究目的 | 第22页 |
| 1.2.2 主要内容 | 第22页 |
| 1.2.3 技术路线 | 第22页 |
| 1.2.4 主要创新点 | 第22-24页 |
| 第二章 文献综述 | 第24-49页 |
| 2.1 高等植物叶色突变体的研究进展 | 第24-33页 |
| 2.1.1 叶色突变体的类型及产生途径 | 第24-26页 |
| 2.1.2 叶色突变的分子机制 | 第26-31页 |
| 2.1.3 叶色突变体的应用 | 第31-33页 |
| 2.2 质体→核反向信号途径 | 第33-46页 |
| 2.2.1 四吡咯生物合成前体反向信号途径 | 第34-38页 |
| 2.2.2 质体基因表达依赖性反向信号途径 | 第38-39页 |
| 2.2.3 叶绿体氧化-还原状态依赖性反向信号途径 | 第39-44页 |
| 2.2.4 氧化自由基ROS依赖的反向信号途径 | 第44-45页 |
| 2.2.5 一些新的反向信号途径 | 第45-46页 |
| 2.3 植物表观遗传概述 | 第46-49页 |
| 2.3.1 DNA甲基化抑制剂可产生植物遗传表观变异 | 第47页 |
| 2.3.2 基因的DNA甲基化突变产生可遗传的植物表观变异 | 第47-48页 |
| 2.3.3 表观遗传变异与作物育种 | 第48-49页 |
| 第三章 黄叶突变基因XNT的精细定位与候选基因分析 | 第49-68页 |
| 摘要 | 第49-50页 |
| 3.1 材料与方法 | 第50-57页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第50页 |
| 3.1.2 叶绿素含量的测定 | 第50页 |
| 3.1.3 DNA的提取 | 第50页 |
| 3.1.4 PCR扩增及凝胶电泳检测 | 第50-51页 |
| 3.1.5 高分辨熔解(HRM)曲线分型 | 第51页 |
| 3.1.6 分子标记的开发与利用 | 第51页 |
| 3.1.7 作图分析 | 第51-52页 |
| 3.1.8 gun4等位基因突变体的培育及分子鉴定 | 第52页 |
| 3.1.9 基因组序列测序 | 第52-55页 |
| 3.1.10 RNA分析 | 第55-56页 |
| 3.1.11 Western blot | 第56-57页 |
| 3.2 结果与分析 | 第57-66页 |
| 3.2.1 表型特征 | 第57-58页 |
| 3.2.2 HYB中突变位点XNT的精细定位 | 第58-62页 |
| 3.2.3 候选基因分析 | 第62-64页 |
| 3.2.4 等位基因突变体的鉴定与特征 | 第64-66页 |
| 3.3 讨论 | 第66-68页 |
| 3.3.1 XNT是一个新的叶色变异位点 | 第66页 |
| 3.3.2 OsGUN4基因不同位点的突变产生不同的效应 | 第66页 |
| 3.3.3 OsGUN4及其在叶绿素合成中的功能 | 第66-68页 |
| 第四章 OSGUN4基因的甲基化分析 | 第68-75页 |
| 摘要 | 第68-69页 |
| 4.1 材料与方法 | 第69-70页 |
| 4.1.1 材料 | 第69页 |
| 4.1.2 甲基化测序 | 第69-70页 |
| 4.1.3 去甲基化处理 | 第70页 |
| 4.2 结果与分析 | 第70-73页 |
| 4.2.1 OsGUN4的甲基化分析 | 第70-71页 |
| 4.2.2 HYB突变体及黄叶后代个体的去甲基化分析 | 第71-72页 |
| 4.2.3 黄叶表型与HYB后代个体中的连锁性分析 | 第72-73页 |
| 4.3 讨论 | 第73-75页 |
| 4.3.1 epi-GUN4等位基因的鉴定 | 第73-74页 |
| 4.3.2 等位基因epi-GUN4的来源 | 第74-75页 |
| 第五章 OSGUN4基因特性的鉴定 | 第75-88页 |
| 摘要 | 第75-76页 |
| 5.1 材料与方法 | 第76-78页 |
| 5.1.1 试验材料及处理 | 第76-77页 |
| 5.1.2 RNA提取及qRT-PCR | 第77页 |
| 5.1.3 亚细胞定位 | 第77-78页 |
| 5.1.4 数据处理 | 第78页 |
| 5.2 结果与分析 | 第78-87页 |
| 5.2.1 OsGUN4基因序列和蛋白结构预测 | 第78-81页 |
| 5.2.2 GUN表型的检测 | 第81-82页 |
| 5.2.3 OsGUN4基因受强光和H_2O_2的诱导表达 | 第82-84页 |
| 5.2.4 OsGUN4基因的表达光照周期节律 | 第84-85页 |
| 5.2.5 OsGUN4定位于叶绿体 | 第85-87页 |
| 5.3 讨论 | 第87-88页 |
| 第六章 OSGUN4基因功能的初步分析 | 第88-106页 |
| 摘要 | 第88-92页 |
| 6.1 材料与方法 | 第92-93页 |
| 6.1.1 试验材料 | 第92页 |
| 6.1.2 RNA提取及qRT-PCR | 第92-93页 |
| 6.2 结果与分析 | 第93-101页 |
| 6.2.1 强光胁迫下OsGUN4突变对Nrf2-ARE/Keap1抗氧化系统表达的影响 | 第93-94页 |
| 6.2.2 H_2O_2胁迫下OsGUN4突变对Nrf2-ARE/Keap1抗氧化系统表达的影响 | 第94-96页 |
| 6.2.3 强光和H_2O_2胁迫下光系统基因LHCB和PsaA的表达能力 | 第96页 |
| 6.2.4 Nrf2和Keapl受H_2O_2的间接诱导表达 | 第96-97页 |
| 6.2.5 OsGUN4突变影响ROS诱导的抗氧化基因的表达 | 第97-99页 |
| 6.2.6 OsGUN4突变对GUN家族其他基因表达的影响 | 第99-100页 |
| 6.2.7 OsGUN4与目前已发现的新的质体→核反向信号途径之间的关系 | 第100-101页 |
| 6.3 讨论 | 第101-106页 |
| 6.3.1 GUN4参与Nrf2-ARE/Keap1途径调控抗氧化基因的表达 | 第101-102页 |
| 6.3.2 GUN4促进叶绿素的合成 | 第102-103页 |
| 6.3.3 GUN4反向调控核基因的机理探讨 | 第103-104页 |
| 6.3.4 GUN4参与调控核基因的表达的假说 | 第104-106页 |
| 研究结论 | 第106-107页 |
| 参考文献 | 第107-127页 |
| 作者简介 | 第127页 |
