| 致谢 | 第6-7页 |
| 目录 | 第7-11页 |
| 摘要 | 第11-14页 |
| Abstract | 第14-16页 |
| 第一章 文献综述 | 第17-34页 |
| 1.1 叶片衰老的特征 | 第17-18页 |
| 1.1.1 起始阶段—叶片衰老诱导 | 第17页 |
| 1.1.2 衰退阶段—物质降解 | 第17-18页 |
| 1.1.3 终末阶段—细胞死亡 | 第18页 |
| 1.2 叶片衰老诱导机制 | 第18-20页 |
| 1.2.1 营养胁迫假说 | 第18-19页 |
| 1.2.2 光碳失衡假说 | 第19页 |
| 1.2.3 自由基理论 | 第19页 |
| 1.2.4 激素调控学说 | 第19-20页 |
| 1.2.5 糖诱导学说 | 第20页 |
| 1.3 叶片衰老过程的生理生化研究进展 | 第20-25页 |
| 1.3.1 叶绿素降解 | 第20-21页 |
| 1.3.2 光合功能衰退 | 第21-22页 |
| 1.3.3 碳水化合物变化 | 第22-23页 |
| 1.3.4 蛋白质水解 | 第23页 |
| 1.3.5 抗氧化系统及细胞膜结构损伤 | 第23-25页 |
| 1.4 叶片衰老相关基因研究 | 第25-28页 |
| 1.5 植物衰老研究实验系统 | 第28-32页 |
| 1.5.1 常规植株材料 | 第28页 |
| 1.5.2 离体器官研究 | 第28-29页 |
| 1.5.3 转基因植物 | 第29-30页 |
| 1.5.4 构建突变体材料 | 第30-32页 |
| 1.6 本项目研究的意义、目标、内容 | 第32-34页 |
| 第二章 叶片早衰对产量形成的影响及其光合生理特性变化 | 第34-49页 |
| 2.1 引言 | 第34-35页 |
| 2.2 材料与方法 | 第35-37页 |
| 2.2.1 试验材料种植 | 第35页 |
| 2.2.2 叶绿素含量测定 | 第35-36页 |
| 2.2.3 光合速率和叶绿素荧光参数测定 | 第36页 |
| 2.2.4 水稻叶片RNA提取、纯化和cDNA第一链的合成 | 第36-37页 |
| 2.2.5 实时荧光定量PCR(qRT-PCR)检测基因表达 | 第37页 |
| 2.3 结果与分析 | 第37-45页 |
| 2.3.1 早衰突变体水稻的衰老表型与产量性状 | 第37-42页 |
| 2.3.2 早衰突变体Y225旗叶中叶绿素含量在灌浆过程的变化 | 第42页 |
| 2.3.3 早衰突变体esl旗叶的光合速率和叶绿素荧光参数在灌浆期的叶片衰老过程中的动态变化 | 第42-44页 |
| 2.3.4 早衰突变体esl与其野生型水稻叶片中捕光叶绿素a/b结合蛋白基因(Cab)和PSⅡ反应中心结构蛋白基因在衰老过程中表达差异 | 第44-45页 |
| 2.4 讨论 | 第45-48页 |
| 2.5 小结 | 第48-49页 |
| 第三章 糖对叶片衰老的调控以及衰老叶片中淀粉的积累与动员 | 第49-78页 |
| 3.1 引言 | 第49-50页 |
| 3.2 材料与方法 | 第50-53页 |
| 3.2.1 试验材料 | 第50-51页 |
| 3.2.2 水稻叶片离体糖培养 | 第51页 |
| 3.2.3 叶片糖含量测定 | 第51页 |
| 3.2.4 叶片叶绿素含量测定 | 第51页 |
| 3.2.5 水稻叶片RNA提取、纯化和cDNA第一链的合成 | 第51-52页 |
| 3.2.6 碳水化合物代谢相关基因引物设计 | 第52页 |
| 3.2.7 实时荧光定量RT-PCR | 第52页 |
| 3.2.8 半定量RT-PCR | 第52-53页 |
| 3.3 结果与分析 | 第53-72页 |
| 3.3.1 糖水平对叶片衰老的影响 | 第53-66页 |
| 3.3.2 水稻叶片衰老与蔗糖合成相关基因表达间的关系 | 第66-69页 |
| 3.3.3 叶片早衰对淀粉代谢的影响 | 第69-72页 |
| 3.4 讨论 | 第72-76页 |
| 3.4.1 糖水平对叶片衰老的影响 | 第72-74页 |
| 3.4.2 叶片衰老与蔗糖合成的关系 | 第74-75页 |
| 3.4.3 叶片衰老与淀粉代谢的关系 | 第75-76页 |
| 3.5 小结 | 第76-78页 |
| 第四章 AsA-GSH循环调控H_2O_2及其对esl突变体叶片衰老的影响 | 第78-98页 |
| 4.1 引言 | 第78-80页 |
| 4.2 材料与方法 | 第80-82页 |
| 4.2.1 试验材料 | 第80页 |
| 4.2.2 水稻叶片的H_2O_2离体培养 | 第80页 |
| 4.2.3 叶绿素、可溶性蛋白、MDA和H_2O_2含量测定 | 第80页 |
| 4.2.4 AsA和GSH含量测定 | 第80-81页 |
| 4.2.5 APX和GR活性测定 | 第81页 |
| 4.2.6 RNA提取、纯化和cDNA的合成 | 第81页 |
| 4.2.7 实时荧光定量RT-PCR分析 | 第81-82页 |
| 4.3 结果与分析 | 第82-91页 |
| 4.3.1 esl突变体及其野生型水稻叶片在灌浆过程的衰老变化 | 第82-83页 |
| 4.3.2 叶片AsA-GSH循环代谢关键酶活性及其抗氧化物质在衰老过程中的差异变化 | 第83-84页 |
| 4.3.3 AsA-GSH循环中代谢酶基因家族在叶片衰老过程的转录差异和动态表达模式 | 第84-89页 |
| 4.3.4 H_2O_2调节叶片衰老与OsAPX同工基因表达间的联系 | 第89-91页 |
| 4.4 讨论 | 第91-97页 |
| 4.5 小结 | 第97-98页 |
| 第五章 不同基因型水稻叶片中CAT同工基因响应内源H_2O_2的表达差异及其对叶片衰老的调控 | 第98-109页 |
| 5.1 引言 | 第98-100页 |
| 5.2 材料与方法 | 第100-101页 |
| 5.2.1 试验材料种植 | 第100页 |
| 5.2.2 离体培养试验 | 第100页 |
| 5.2.3 叶绿素含量、相对电导率和MDA浓度测定 | 第100页 |
| 5.2.4 RNA提取、纯化和cDNA的合成 | 第100页 |
| 5.2.5 实时荧光定量RT-PCR分析 | 第100页 |
| 5.2.6 半定量RT-PCR | 第100-101页 |
| 5.3 结果与分析 | 第101-106页 |
| 5.3.1 H_2O_2调控叶片衰老进程 | 第101页 |
| 5.3.2 CAT同工基因在衰老叶片中的差异表达及其与H_2O_2的关系 | 第101-104页 |
| 5.3.3 外源ABA调节H_2O_2的产生和叶片衰老,及其与CAT同工基因表达的联系 | 第104-106页 |
| 5.4 讨论 | 第106-108页 |
| 5.5 小结 | 第108-109页 |
| 第六章 叶片衰老过程中基于质膜NADPH氧化酶(PM-NOX)的O_2~-产生特性 | 第109-120页 |
| 6.1 引言 | 第109-110页 |
| 6.2 材料与方法 | 第110-111页 |
| 6.2.1 试验材料 | 第110页 |
| 6.2.2 离体培养试验 | 第110页 |
| 6.2.3 O_2~-产生速率测定和O_2~-组织化学染色 | 第110页 |
| 6.2.4 ABA含量测定 | 第110页 |
| 6.2.5 RNA提取、纯化和cDNA的合成 | 第110页 |
| 6.2.6 实时荧光定量RT-PCR分析 | 第110-111页 |
| 6.3 结果与分析 | 第111-118页 |
| 6.3.1 esl突变体叶片在衰老过程中ABA诱导O_2~-的产生 | 第111-112页 |
| 6.3.2 NOX同工基因响应ABA诱导的表达模式 | 第112-115页 |
| 6.3.3 esl突变体叶片中NOX在衰老过程的表达差异 | 第115-118页 |
| 6.4 讨论 | 第118-119页 |
| 6.5 小结 | 第119-120页 |
| 第七章 全文结论与展望 | 第120-122页 |
| 7.1 结论 | 第120-121页 |
| 7.2 展望 | 第121-122页 |
| 参考文献 | 第122-140页 |
| 攻读博士学位期间所发表论文 | 第140页 |
