| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 英文缩写词表 | 第9-13页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-19页 |
| 1 研究背景 | 第13页 |
| 2 副溶血性弧菌 | 第13-14页 |
| 2.1 副溶血性弧菌的生物特性 | 第13-14页 |
| 2.2 副溶血性弧菌致病因子 | 第14页 |
| 3 微生物预测模型 | 第14-15页 |
| 4 副溶血性弧菌微生物预测模型进展 | 第15-17页 |
| 4.1 一级模型 | 第15-16页 |
| 4.2 二级模型 | 第16页 |
| 4.3 失活模型 | 第16-17页 |
| 5 副溶血性弧菌的风险评估 | 第17页 |
| 6 研究意义与目的 | 第17-18页 |
| 7 主要研究内容与研究路线 | 第18-19页 |
| 第二章 胁迫温度下两株高致病性副溶血弧菌的生长差异比较分析 | 第19-30页 |
| 1 引言 | 第19-20页 |
| 2 材料与方法 | 第20-23页 |
| 2.1 实验仪器与材料 | 第20页 |
| 2.2 无菌虾样的制备 | 第20页 |
| 2.3 菌株悬浮液制备与接种 | 第20页 |
| 2.4 微生物计数 | 第20-21页 |
| 2.5 生长数据的拟合 | 第21-23页 |
| 2.5.1 一级模型拟合 | 第21页 |
| 2.5.2 失活模型 | 第21-22页 |
| 2.5.3 二级模型 | 第22页 |
| 2.5.4 模型评价 | 第22-23页 |
| 3 结果与分析 | 第23-28页 |
| 3.1 不同温度下副溶血性弧菌的生长差异分析 | 第23-25页 |
| 3.2 不同温度条件下两株致病性副溶血性弧菌的一级模型比较 | 第25-26页 |
| 3.3 不同温度条件下两株致病性副溶血性弧菌的二级模型建立及其与同类研究做比较 | 第26-28页 |
| 4 小结 | 第28-30页 |
| 第三章 致病性与非致病性副溶血性弧菌在南美白对虾上混合培养的生长行为 | 第30-44页 |
| 1 引言 | 第30-31页 |
| 2 材料与方法 | 第31-32页 |
| 2.1 菌株活化和培养基准备 | 第31页 |
| 2.2 虾样的准备 | 第31页 |
| 2.3 实验步骤 | 第31页 |
| 2.4 数据处理 | 第31-32页 |
| 3 结果与讨论 | 第32-43页 |
| 3.1 模型的选择 | 第32-34页 |
| 3.2 二级模型 | 第34-37页 |
| 3.3 15℃-30℃时副溶血性弧菌混合菌株在即食南美白对虾上生长行为分析 | 第37-40页 |
| 3.4 4℃-7℃条件下的失活行为 | 第40-42页 |
| 3.5 10℃条件下副溶血性弧菌混合菌株及其单菌株的生长行为分析 | 第42-43页 |
| 4 结论 | 第43-44页 |
| 第四章 PMA-qPCR法探究即食南美白对虾中不同基因型副溶血性弧菌在其混合菌株中的生长行为 | 第44-54页 |
| 1.引言 | 第44-45页 |
| 2. 材料与方法 | 第45-49页 |
| 2.1 实验仪器与主要试剂 | 第45页 |
| 2.2 菌株活化及培养条件 | 第45-46页 |
| 2.2.1 副溶血性弧菌菌株活化 | 第45页 |
| 2.2.2 即食南美白对虾样的制备 | 第45-46页 |
| 2.2.3 混合菌株的制备以及感染虾样 | 第46页 |
| 2.2.4 微生物计数 | 第46页 |
| 2.3 叠氮溴化丙锭（PMA）优化处理 | 第46页 |
| 2.4 虾样DNA的提取 | 第46页 |
| 2.5 多重Real-time PCR体系的建立 | 第46-47页 |
| 2.6 PMA多重Real-time PCR标准曲线的构建 | 第47-48页 |
| 2.7 PMA多重Real-time PCR定量检测不同基因型副溶血性弧菌混合菌株在 10℃时的生长行为 | 第48-49页 |
| 3.结果与讨论 | 第49-52页 |
| 3.1 PMA多重Real-time PCR的标准曲线 | 第49-50页 |
| 3.2 PMA多重Real-time PCR定量检测即食虾中不同基因型副溶血性弧菌在混合培养时的生长行为 | 第50-51页 |
| 3.3 混合培养菌株与单一培养菌株的生长行为差异 | 第51-52页 |
| 4. 结论 | 第52-54页 |
| 全文总结 | 第54-56页 |
| 参考文献 | 第56-68页 |
| 攻读硕士学位期间取得的科研成果 | 第68-69页 |
| 致谢 | 第69页 |
