| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 缩略语/符号说明 | 第13-16页 |
| 前言 | 第16-20页 |
| 研究现状、成果 | 第16-19页 |
| 研究目的、方法 | 第19-20页 |
| 一、柚皮苷对共培养体系中成骨细胞活性及破骨细胞分化的影响 | 第20-41页 |
| 1.1 对象和方法 | 第20-33页 |
| 1.1.1 细胞来源 | 第20页 |
| 1.1.2 实验材料与试剂 | 第20-22页 |
| 1.1.3 实验仪器 | 第22页 |
| 1.1.4 实验试剂配制 | 第22-24页 |
| 1.1.5 实验方法 | 第24-33页 |
| 1.1.6 统计学方法 | 第33页 |
| 1.2 结果 | 第33-38页 |
| 1.2.1 OB与OC的鉴定结果 | 第33-34页 |
| 1.2.2 TRAP计数结果与定量分析 | 第34-35页 |
| 1.2.3 骨吸收陷窝结果 | 第35-36页 |
| 1.2.4 P C R结果 | 第36-37页 |
| 1.2.5 Western-bl ot结果 | 第37页 |
| 1.2.6 A LP活性结果 | 第37-38页 |
| 1.3 讨论 | 第38-40页 |
| 1.3.1 骨质疏松的流行病学以及发病机制 | 第38页 |
| 1.3.2 成骨细胞与破骨细胞共培养及其比例选择 | 第38-39页 |
| 1.3.3 柚皮苷对成骨细胞以及破骨细胞的作用机制 | 第39页 |
| 1.3.4 OPG/RANKL在骨代谢中的作用 | 第39-40页 |
| 1.3.5 实验不足之处 | 第40页 |
| 1.4 小结 | 第40-41页 |
| 二、柚皮苷对内皮祖细胞成血管能力的影响及其机制研究 | 第41-63页 |
| 2.1 对象和方法 | 第41-47页 |
| 2.1.1 细胞来源 | 第41页 |
| 2.1.2 实验材料与试剂 | 第41-43页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第43-44页 |
| 2.1.4 实验试剂和常用溶液配制 | 第44-46页 |
| 2.1.5 内皮祖细胞的原代获取及培养 | 第46-47页 |
| 2.2 实验方法 | 第47-54页 |
| 2.2.1 免疫荧光鉴定EPCs | 第48页 |
| 2.2.2 MTT法探讨柚皮苷对EPCs的最佳浓度 | 第48页 |
| 2.2.3 Matrigel基质胶血管形成长度以及面积评价EPCs分化 | 第48-49页 |
| 2.2.4 干预方法 | 第49页 |
| 2.2.5 PCR | 第49-51页 |
| 2.2.6 蛋白质抽提和浓度测定 | 第51-54页 |
| 2.2.7 统计学方法 | 第54页 |
| 2.3 实验结果 | 第54-59页 |
| 2.3.1 内皮祖细胞培养及鉴定结果 | 第54-56页 |
| 2.3.2 MTT结果 | 第56页 |
| 2.3.3 柚皮苷对SDF-1α，CXCR-4，PI3K以及Akt基因表达的影响 | 第56-57页 |
| 2.3.4 柚皮苷对SDF-1α 以及CXCR-4 蛋白表达的影响 | 第57-58页 |
| 2.3.5 柚皮苷对血管长度以及面积的影响 | 第58页 |
| 2.3.6 添加AMD3100以及LY294002后柚皮苷对成血管能力的影响 | 第58-59页 |
| 2.3.7 添加AMD3100以及LY294003后柚皮苷对蛋白表达的影响 | 第59页 |
| 2.4 讨论 | 第59-62页 |
| 2.4.1 内皮祖细胞培养与鉴定 | 第59-60页 |
| 2.4.2 柚皮苷促血管化机制 | 第60-61页 |
| 2.4.3 SDF-1α/CXCR4轴在内皮祖细胞动员以及分化中的作用 | 第61页 |
| 2.4.4 PI3K/Akt信号通路在内皮祖细胞分化中的作用 | 第61-62页 |
| 2.5 小结 | 第62-63页 |
| 结论 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-70页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第70-72页 |
| 附录 | 第72-73页 |
| 综述 | 第73-86页 |
| 综述参考文献 | 第80-86页 |
| 致谢 | 第86-87页 |
| 个人简历 | 第87页 |
