中文摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
中英文缩略词表 | 第7-12页 |
前言 | 第12-14页 |
文献综述 | 第14-32页 |
1 中药多糖对缺血性脑损伤保护作用的研究进展 | 第14-17页 |
1.1 抗氧化 | 第14-15页 |
1.2 抑制细胞凋亡 | 第15-16页 |
1.3 抗炎 | 第16页 |
1.4 影响神经递质的释放 | 第16页 |
1.5 保护脑组织超微结构 | 第16-17页 |
1.6 其他 | 第17页 |
2 中药多糖对血管内皮细胞保护作用的研究进展 | 第17-22页 |
2.1 保护血管内皮细胞的结构完整性 | 第18页 |
2.2 增强血管内皮细胞的增殖活性,促进血管新生 | 第18-19页 |
2.3 维持血管内皮细胞的纤溶平衡,防止血栓形成 | 第19页 |
2.4 抗血管内皮细胞炎症反应 | 第19-20页 |
2.5 抑制血管内皮细胞凋亡 | 第20页 |
2.6 抗血管内皮细胞衰老 | 第20-21页 |
2.7 调节血管舒缩因子的分泌 | 第21页 |
2.8 对脑微血管内皮细胞的保护作用 | 第21-22页 |
3 氧化低密度脂蛋白对内皮细胞损伤的研究进展 | 第22-24页 |
4 中药多糖对内皮细胞氧化损伤的保护作用研究进展 | 第24-25页 |
5 中药多糖蛋白质组学研究进展 | 第25-28页 |
6 内皮细胞蛋白组学研究进展 | 第28-32页 |
6.1 外周血管内皮细胞与蛋白质组学 | 第28-30页 |
6.2 脑血管内皮细胞与蛋白质组学 | 第30-32页 |
1. 实验材料 | 第32-37页 |
1.1 细胞 | 第32页 |
1.2 试验药物 | 第32页 |
1.3 主要试剂 | 第32-33页 |
1.4 主要仪器 | 第33-34页 |
1.5 溶液配制 | 第34-37页 |
1.5.1 细胞裂解液 | 第34页 |
1.5.2 10×PBS(常温) | 第34页 |
1.5.3 1×PBST(常温) | 第34页 |
1.5.4 DMEM/F12完全培养液 | 第34页 |
1.5.5 Bradford工作液 | 第34-35页 |
1.5.6 10%过硫酸铵(Ap) | 第35页 |
1.5.7 Tris-HCl(1.5 mol/L pH 8.8): | 第35页 |
1.5.8 Tris-HCl(0.5 mol/L pH 6.8): | 第35页 |
1.5.9 30% 聚丙烯酰胺贮液: | 第35页 |
1.5.10 水化上样缓冲液: | 第35-36页 |
1.5.11 10×电泳缓冲液(常温): | 第36页 |
1.5.12 0.5%琼脂糖封胶液: | 第36页 |
1.5.13 胶条平衡缓冲液: | 第36-37页 |
1.5.14 10%SDS溶液: | 第37页 |
1.5.15 BSA蛋白标准(1mg/m L) | 第37页 |
1.5.16 12% SDS-PAGE分离胶配制 | 第37页 |
1.5.17 凝胶保存液 | 第37页 |
2. 实验方法 | 第37-41页 |
2.1 细胞培养 | 第37页 |
2.2 氧化低密度脂蛋白诱导氧化损伤细胞模型的建立 | 第37-38页 |
2.3 不同浓度的红芪多糖对氧化损伤HBMEC细胞的保护作用 | 第38页 |
2.4 倒置显微镜下观察HBMEC细胞的形态学 | 第38页 |
2.5 细胞总蛋白的提取 | 第38页 |
2.6 蛋白质的纯化 | 第38-39页 |
2.7 蛋白质浓度的测定 | 第39页 |
2.8 双向凝胶电泳 | 第39-41页 |
2.9 考马斯亮蓝染色 | 第41页 |
2.10 凝胶图像的采集与分析 | 第41页 |
2.11 差异蛋白点的质谱鉴定 | 第41页 |
2.12 统计学方法 | 第41页 |
3. 实验结果 | 第41-46页 |
3.1 红芪多糖对HBMEC细胞氧化损伤模型存活率的影响 | 第41-42页 |
3.2 HBMEC细胞氧化损伤模型及红芪多糖干预后的细胞形态学观察 | 第42-43页 |
3.3 对照组、模型组和红芪多糖组HBMEC细胞的双向电泳图谱分析 | 第43页 |
3.4 HBMEC细胞差异蛋白点的质谱鉴定 | 第43-46页 |
4. 讨论 | 第46-49页 |
结论 | 第49-50页 |
参考文献 | 第50-59页 |
在学期间的研究成果 | 第59-60页 |
致谢 | 第60页 |