| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 第一章 绪论 | 第11-31页 |
| 1.1 前言 | 第11页 |
| 1.2 混合模式色谱技术 | 第11-16页 |
| 1.2.1 反相/离子交换模式(RPLC/IEC) | 第12-14页 |
| 1.2.2 离子交换/疏水模式(IEC/HIC) | 第14页 |
| 1.2.3 亲水/离子交换模式(HILIC/IEC) | 第14-15页 |
| 1.2.4 亲水/反相模式(HILIC/RPLC) | 第15-16页 |
| 1.3 离子液体及其在液相色谱中的应用 | 第16-22页 |
| 1.3.1 离子液体的概述 | 第16-17页 |
| 1.3.2 离子液体在液相色谱中的研究概述 | 第17-19页 |
| 1.3.3 离子液体键合色谱固定相的制备 | 第19-21页 |
| 1.3.4 离子液体键合色谱固定相的应用 | 第21-22页 |
| 1.4 本论文的研究意义和研究工作 | 第22-23页 |
| 参考文献 | 第23-31页 |
| 第二章 以N-甲基咪唑为配基的一种混合模式色谱固定相的制备及其色谱性能 | 第31-47页 |
| 2.1 引言 | 第31-32页 |
| 2.2 实验部分 | 第32-35页 |
| 2.2.1 仪器 | 第32页 |
| 2.2.2 试剂 | 第32-34页 |
| 2.2.3 固定相的合成及表征 | 第34页 |
| 2.2.4 N-甲基咪唑改性硅胶色谱柱的装填 | 第34页 |
| 2.2.5 色谱条件 | 第34页 |
| 2.2.6 蛋白质量回收率的测定 | 第34-35页 |
| 2.2.7 鸡蛋清预处理 | 第35页 |
| 2.2.8 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第35页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第35-44页 |
| 2.3.1 N-甲基咪唑改性硅胶的表征 | 第35-36页 |
| 2.3.2 N-甲基咪唑改性硅胶色谱条件的研究 | 第36-38页 |
| 2.3.3 N-甲基咪唑改性硅胶与C_(18)柱的对比研究 | 第38-39页 |
| 2.3.4 N-甲基咪唑改性硅胶的色谱保留特征 | 第39-40页 |
| 2.3.5 流动相中乙腈浓度对蛋白分离的影响 | 第40-41页 |
| 2.3.6 流动相中盐浓度对蛋白分离的影响 | 第41-42页 |
| 2.3.7 流动相中pH值对蛋白分离的影响 | 第42-43页 |
| 2.3.8 N-甲基咪唑硅胶柱的应用 | 第43-44页 |
| 2.4 本章小结 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-47页 |
| 第三章 蛋白质在N-甲基咪唑键合色谱固定相上的保留机理 | 第47-57页 |
| 3.1 引言 | 第47-48页 |
| 3.2 实验部分 | 第48-50页 |
| 3.2.1 仪器 | 第48页 |
| 3.2.2 试剂 | 第48页 |
| 3.2.3 容量因子测定 | 第48-49页 |
| 3.2.4 色谱条件 | 第49页 |
| 3.2.5 参数logI及Z的测定 | 第49-50页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第50-55页 |
| 3.3.1 N-甲基咪唑固定相在反相体系中计量置换保留机理的研究 | 第50-53页 |
| 3.3.2 N-甲基咪唑固定相在离子交换体系中计量置换保留机理的研究 | 第53-55页 |
| 3.4 本章小结 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-57页 |
| 第四章 吡啶、4-甲基噻唑和吡嗪键合硅胶固定相的色谱行为 | 第57-68页 |
| 4.1 引言 | 第57页 |
| 4.2 实验部分 | 第57-58页 |
| 4.2.1 仪器 | 第57页 |
| 4.2.2 试剂 | 第57-58页 |
| 4.2.3 固定相的合成 | 第58页 |
| 4.2.4 吡啶、4-甲基噻唑和吡嗪改性硅胶色谱柱的装填 | 第58页 |
| 4.2.5 色谱条件 | 第58页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第58-66页 |
| 4.3.1 三种离子液体阳离子改性硅胶的色谱表征 | 第58-62页 |
| 4.3.2 分离条件对蛋白保留的影响 | 第62-66页 |
| 4.4 本章小结 | 第66页 |
| 参考文献 | 第66-68页 |
| 硕士期间取得的研究成果 | 第68-69页 |
| 致谢 | 第69页 |
