| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 缩略词英汉对照 | 第12-13页 |
| 第1章 文献回顾 | 第13-23页 |
| 1.1 胃溃疡 | 第13-18页 |
| 1.1.1 胃溃疡基本概况 | 第13-14页 |
| 1.1.2 胃溃疡模型 | 第14-16页 |
| 1.1.3 与胃溃疡相关的细胞因子 | 第16-18页 |
| 1.2 白芨 | 第18-22页 |
| 1.2.1 白芨的基本概况 | 第18页 |
| 1.2.2 白芨的化学成分 | 第18-19页 |
| 1.2.3 白芨多糖的生物活性 | 第19-20页 |
| 1.2.4 白芨多糖的制取工艺 | 第20-22页 |
| 1.3 课题的选题依据、研究意义及主要内容 | 第22-23页 |
| 1.3.1 依据和研究意义 | 第22页 |
| 1.3.2 主要研究内容 | 第22-23页 |
| 第2章 白芨多糖的提取、分离和纯化 | 第23-29页 |
| 2.1 实验材料与仪器 | 第23-24页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第23页 |
| 2.1.2 仪器与试剂 | 第23-24页 |
| 2.2 实验方法 | 第24-25页 |
| 2.2.1 白芨粗多糖的提取、分离及纯化 | 第24-25页 |
| 2.2.2 白芨多糖总糖含量、蛋白含量的检测 | 第25页 |
| 2.3 结果与分析 | 第25-27页 |
| 2.3.1 白芨多糖的提取、分离和纯化 | 第25-26页 |
| 2.3.2 白芨多糖总糖含量、蛋白含量的检测 | 第26-27页 |
| 2.4 实验小结 | 第27-29页 |
| 第3章 小鼠乙酸型胃溃疡模型的建立 | 第29-37页 |
| 3.1 实验动物、仪器及试剂 | 第29页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第29页 |
| 3.1.2 仪器及试剂 | 第29页 |
| 3.2 实验方法 | 第29-31页 |
| 3.2.1 手术建立小鼠乙酸型胃溃疡模型 | 第29-30页 |
| 3.2.2 胃溃疡形态学观察 | 第30-31页 |
| 3.2.3 统计处理 | 第31页 |
| 3.3 实验结果 | 第31-34页 |
| 3.3.1 一般观察 | 第31页 |
| 3.3.2 肉眼观察 | 第31-33页 |
| 3.3.3 溃疡指数(UI)的测定 | 第33-34页 |
| 3.4 小结与讨论 | 第34-37页 |
| 第4章 白芨多糖治疗小鼠乙酸型胃溃疡的效果 | 第37-45页 |
| 4.1 实验器材 | 第37页 |
| 4.1.1 实验药品 | 第37页 |
| 4.1.2 实验动物 | 第37页 |
| 4.1.3 仪器与试剂 | 第37页 |
| 4.2 实验方法 | 第37-40页 |
| 4.2.1 复制小鼠乙酸型胃溃疡模型 | 第37-38页 |
| 4.2.2 白芨多糖治疗小鼠乙酸型胃溃疡 | 第38页 |
| 4.2.3 小鼠胃溃疡的观察 | 第38-39页 |
| 4.2.4 统计处理 | 第39-40页 |
| 4.3 实验结果 | 第40-42页 |
| 4.3.1 测定溃疡指数(UI),计算溃疡抑制率 | 第40-41页 |
| 4.3.2 HE染色进行组织学观察 | 第41-42页 |
| 4.4 实验小结与讨论 | 第42-45页 |
| 第5章 白芨多糖治疗小鼠乙酸型胃溃疡的机制探究 | 第45-59页 |
| 5.1 实验器材 | 第45页 |
| 5.1.1 实验材料 | 第45页 |
| 5.1.2 仪器与试剂 | 第45页 |
| 5.2 实验方法 | 第45-49页 |
| 5.2.1 荧光实时定量PCR检测小鼠胃组织中基因表达 | 第45-48页 |
| 5.2.2 ELISA检测小鼠血清中因子含量变化 | 第48-49页 |
| 5.2.3 统计处理 | 第49页 |
| 5.3 实验结果 | 第49-55页 |
| 5.3.1 荧光实时定量PCR检测COX-2、VEGF、NF-κ Bp65和CXCL1的基因表达 | 第49-52页 |
| 5.3.2 ELISA检测小鼠血清中1L-1β、TNF-α、1L-10、EGF含量变化 | 第52-55页 |
| 5.4 讨论 | 第55-59页 |
| 第6章 实验结论 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-75页 |
| 读硕士学位期间的研究成果 | 第75页 |
