| 摘要 | 第1-4页 |
| ABSTRACT | 第4-10页 |
| 1.前言 | 第10-24页 |
| ·环糊精的结构和性质 | 第10-12页 |
| ·环糊精的化学结构特点及其分类 | 第10页 |
| ·环糊精的物理性质 | 第10-12页 |
| ·环糊精的溶解性 | 第10-12页 |
| ·环糊精的稳定性 | 第12页 |
| ·环糊精的结晶 | 第12页 |
| ·环糊精的包结作用 | 第12-15页 |
| ·环糊精的包结物制备方法 | 第12-13页 |
| ·饱和水溶液法 | 第12页 |
| ·研磨法 | 第12页 |
| ·超声波法 | 第12页 |
| ·冷冻干燥法 | 第12-13页 |
| ·环糊精的包结物的鉴定 | 第13-14页 |
| ·显微镜法和电镜扫描法 | 第13页 |
| ·溶解度法 | 第13页 |
| ·薄层色谱法 | 第13页 |
| ·紫外可见分光光度法 | 第13页 |
| ·红外分光光度法 | 第13页 |
| ·热分析法 | 第13页 |
| ·X—射线粉末衍射法 | 第13-14页 |
| ·核磁共振法(NMR) | 第14页 |
| ·包结作用的意义 | 第14-15页 |
| ·增加客体的溶解度 | 第14页 |
| ·增加客体的稳定性 | 第14页 |
| ·减少客体的副作用 | 第14页 |
| ·环糊精作为反应载体 | 第14页 |
| ·环糊精用于色谱的分离 | 第14-15页 |
| ·甾体化合物概述 | 第15-20页 |
| ·甾体化合物的存在形式 | 第15页 |
| ·甾体化合物的作用 | 第15-16页 |
| ·甾体化合物的研究历程 | 第16-18页 |
| ·认知阶段 | 第16页 |
| ·生物组织提取阶段 | 第16-17页 |
| ·化学合成阶段 | 第17页 |
| ·化学合成与生物转化相结合阶段 | 第17-18页 |
| ·甾体化合物的生物转化 | 第18-20页 |
| ·甾体生物转化作用简介 | 第18页 |
| ·甾体生物转化反应类型 | 第18-19页 |
| ·甾体化合物的微生物转化现状 | 第19-20页 |
| ·甾体微生物转化的底物溶解性问题 | 第20-22页 |
| ·环糊精包埋技术 | 第20页 |
| ·非水相介质转化技术 | 第20-21页 |
| ·有机溶剂-水系统 | 第20-21页 |
| ·双水相系统 | 第21页 |
| ·底物微粒化处理 | 第21页 |
| ·其它技术 | 第21-22页 |
| ·超声波技术 | 第21页 |
| ·微乳化技术 | 第21-22页 |
| ·超临界流体技术 | 第22页 |
| ·本课题的研究内容及研究的意义 | 第22-24页 |
| ·本课题的立题依据和意义 | 第22页 |
| ·本课题的研究对象 | 第22-23页 |
| ·本论文的主要研究内容 | 第23-24页 |
| 2 实验材料及方法 | 第24-34页 |
| ·实验材料 | 第24-26页 |
| ·实验菌种 | 第24页 |
| ·实验试剂 | 第24-25页 |
| ·实验仪器 | 第25-26页 |
| ·培养基 | 第26页 |
| ·实验方法 | 第26-34页 |
| ·甾体化合物与β-CD包结物的制备 | 第26页 |
| ·β-CD-RSA包结物的制备 | 第26页 |
| ·β-CD-PS包结物的制备 | 第26页 |
| ·甾体化合物与β-CD包结物的鉴定 | 第26-27页 |
| ·包结物的形态 | 第26页 |
| ·红外光谱分析 | 第26页 |
| ·热重(TG)及其差热分析(DSC) | 第26页 |
| ·X粉末衍射分析 | 第26-27页 |
| ·化合物RSA及其β-CD包结物的溶解度比较 | 第27页 |
| ·化合物RSA的溶解度标准曲线 | 第27页 |
| ·化合物RSA和β-CD-RSA包结物的溶解度的比较 | 第27页 |
| ·β-CD对化合物RSA的紫外光谱的影响 | 第27-28页 |
| ·化合物RSA和β-CD-RSA包结物的紫外光谱 | 第27页 |
| ·β-CD对化合物RSA紫外吸收值的影响 | 第27-28页 |
| ·β-CD-RSA包结物浓度的测定 | 第28页 |
| ·甾体化合物及其包结物的生物转化反应 | 第28-29页 |
| ·化合物RSA的11β-羟化反应 | 第28页 |
| ·β-CD-RSA包结物的11β-羟化反应 | 第28页 |
| ·植物甾醇的侧链降解反应 | 第28-29页 |
| ·添加β-CD的甾体化合物的生物转化反应 | 第29-30页 |
| ·添加β-CD化合物RSA的11β-羟化反应 | 第29页 |
| ·添加β-CD植物甾醇的侧链降解 | 第29-30页 |
| (1) β-CD包结Tween80 | 第29页 |
| (2) β-CD加入时间的选择 | 第29页 |
| (3) β-CD加入量的选择 | 第29-30页 |
| (4) β-CD直接加入速率的比较 | 第30页 |
| ·转化产物的分析方法 | 第30-32页 |
| ·化合物RSA转化产物的分析方法 | 第30-31页 |
| ·植物甾醇转化产物的分析 | 第31-32页 |
| ·β-CD对化合物RSA生物转化反应的机制初步探讨 | 第32-34页 |
| ·菌体细胞对底物的吸附作用 | 第32-33页 |
| ·β-CD对底物化合物RSA与细胞作用的影响 | 第33页 |
| ·β-CD对转化产物HC的影响 | 第33-34页 |
| 3.结果与讨论 | 第34-55页 |
| ·β-CD包结化合物RSA | 第34-36页 |
| ·β-CD与化合物RSA包结时间的确定 | 第34页 |
| ·化合物RSA的β-CD包结物吸收波长的变化 | 第34-35页 |
| ·β-CD对化合物RSA吸收值的影响 | 第35页 |
| ·β-CD-RSA包结物与化合物RSA溶解度的比较 | 第35-36页 |
| ·β-CD-RSA包结物的鉴定 | 第36-39页 |
| ·β-CD-RSA包结物的显微形态 | 第36-37页 |
| ·β-CD-RSA包结物的红外光谱 | 第37-38页 |
| ·热重及其差热分析 | 第38-39页 |
| ·溶解态的β-CD-RSA包结物包结比的推测 | 第39-40页 |
| ·溶解态的β-CD-RSA包结物的化学结构 | 第40-41页 |
| ·β-CD对转化产物提取方式的影响 | 第41-42页 |
| ·加热法萃取产物 | 第41页 |
| ·温度对提取率的影响 | 第41-42页 |
| ·β-CD对提取率的影响 | 第42页 |
| ·β-CD-RSA包结物的11β-羟化反应特性 | 第42-44页 |
| ·β-CD-RSA包结物的转化产物 | 第42-43页 |
| ·不同摩尔比形成的β-CD-RSA包结物的11β-羟化反应特性 | 第43-44页 |
| ·投料前添加β-CD对化合物RSA 11β-羟化反应的影响 | 第44页 |
| ·β-CD对化合物RSA生物转化反应作用机制的初步探讨 | 第44-47页 |
| ·化合物RSA与犁头霉细胞的吸附作用 | 第44-46页 |
| ·β-CD促进化合物RSA与细胞的分离 | 第46页 |
| ·β-CD对转化产物HC的影响 | 第46-47页 |
| ·投料后添加β-CD对化合物RSA 11β-羟化反应的影响 | 第47-48页 |
| ·投料后添加β-CD的时间选择 | 第47-48页 |
| ·投料后添加β-CD11β-羟化反应速率的影响 | 第48页 |
| ·β-CD-PS包结物鉴定及其生物转化 | 第48-51页 |
| ·X-衍射分析 | 第48-49页 |
| ·热重分析和差热分析 | 第49-50页 |
| ·β-CD-PS包结物的生物转化 | 第50-51页 |
| ·加有Tween80、β-CD的PS生物转化 | 第51-55页 |
| ·β-CD包结Tween80 | 第51-52页 |
| ·Tween80、β-CD存在下的PS生物转化 | 第52页 |
| ·Tween80添加量的选择 | 第52-53页 |
| ·β-CD添加时间的选择 | 第53-54页 |
| ·β-CD添加量的选择 | 第54页 |
| ·β-CD加入后PS转化速率的变化 | 第54-55页 |
| 4.结论 | 第55-57页 |
| ·甾体化合物与β-CD包结物的制备方法及其鉴定 | 第55页 |
| ·β-CD包结物的生物转化 | 第55页 |
| ·β-CD影响甾体化合物生物转化反应的机理初步探讨 | 第55页 |
| ·β-CD促进化合物RSA转化速率的提高 | 第55-56页 |
| ·β-CD包结Tween80增加PS与细胞的作用 | 第56页 |
| ·论文的创新点 | 第56-57页 |
| 5.展望 | 第57-58页 |
| 6.参考文献 | 第58-62页 |
| 7.致谢 | 第62-63页 |
| 8.攻读学位期间发表的论文 | 第63页 |
