| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 缩略词 | 第10-12页 |
| 第一章 引言 | 第12-17页 |
| 1.1 国内外研究进展 | 第12-13页 |
| 1.2 研究目的和意义 | 第13-14页 |
| 1.3 研究内容与技术路线 | 第14-16页 |
| 1.3.1 Nsp10单克隆抗体的制备及其线性B细胞表位的鉴定 | 第14页 |
| 1.3.2 Nsp10a亚型的产生及鉴定 | 第14-15页 |
| 1.3.3 Nsp10a亚型产生的分子基础 | 第15-16页 |
| 1.3.4 Nsp10a亚型对PRRSV增殖的影响 | 第16页 |
| 1.4 研究目标 | 第16-17页 |
| 第二章 Nsp10单克隆抗体的制备及其线性B细胞表位的鉴定 | 第17-34页 |
| 2.1 前言 | 第17页 |
| 2.2 材料 | 第17-23页 |
| 2.3 方法 | 第23-28页 |
| 2.4 结果 | 第28-32页 |
| 2.4.1 Nsp10的原核表达与纯化 | 第28页 |
| 2.4.2 Nsp10单克隆抗体的制备及特性分析 | 第28-29页 |
| 2.4.3 单抗4D9亚类的鉴定 | 第29页 |
| 2.4.4 单抗4D9识别表位的鉴定 | 第29-31页 |
| 2.4.5 表位的同源性分析及突变分析 | 第31-32页 |
| 2.4.6 单抗4D9识别基因2型PRRSV毒株 | 第32页 |
| 2.5 讨论 | 第32-33页 |
| 2.6 小结 | 第33-34页 |
| 第三章 NsplOa亚型的发现及鉴定 | 第34-45页 |
| 3.1 前言 | 第34页 |
| 3.2 材料 | 第34-37页 |
| 3.3 方法 | 第37-40页 |
| 3.4 结果 | 第40-43页 |
| 3.4.1 JXwn06感染细胞中Nsp10蛋白存在2种亚型 | 第40-41页 |
| 3.4.2 Nsp10产物表达的时相特征和变化趋势 | 第41-42页 |
| 3.4.3 Nsp10a氨基酸序列的鉴定 | 第42-43页 |
| 3.4.4 Nsp10a大小的鉴定 | 第43页 |
| 3.5 讨论 | 第43-44页 |
| 3.6 小结 | 第44-45页 |
| 第四章 Nsp10a亚型产生的分子基础 | 第45-64页 |
| 4.1 前言 | 第45页 |
| 4.2 材料 | 第45-48页 |
| 4.3 方法 | 第48-54页 |
| 4.4 结果 | 第54-60页 |
| 4.4.1 影响Nsp10a亚型产生的因素 | 第54-55页 |
| 4.4.2 点突变病毒的拯救与鉴定 | 第55-57页 |
| 4.4.3 影响Nsp10a产生的氨基酸位点 | 第57-58页 |
| 4.4.4 Nsp2和Nsp4不能体外剪切Nsp10 | 第58-60页 |
| 4.4.5 Nsp10a的产生与蛋白酶体途径无关 | 第60页 |
| 4.5 讨论 | 第60-63页 |
| 4.6 小结 | 第63-64页 |
| 第五章 Nsp10a亚型对PRRSV增殖的影响 | 第64-70页 |
| 5.1 前言 | 第64页 |
| 5.2 材料 | 第64-66页 |
| 5.3 方法 | 第66-67页 |
| 5.4 结果 | 第67-68页 |
| 5.4.1 拯救毒在MARC-145细胞上的增殖特性 | 第67-68页 |
| 5.4.2 拯救毒在PAMs上的增殖特性 | 第68页 |
| 5.5 讨论 | 第68-69页 |
| 5.6 小结 | 第69-70页 |
| 第六章 结论 | 第70-71页 |
| 第七章 创新点 | 第71-72页 |
| 第八章 文献综述 | 第72-82页 |
| 8.1 细胞解旋酶 | 第72-77页 |
| 8.1.1 解旋酶的发现史及概述 | 第72页 |
| 8.1.2 解旋酶的分类及结构特征 | 第72-74页 |
| 8.1.3 解旋酶的功能 | 第74-75页 |
| 8.1.4 解旋酶功能发挥的模型 | 第75-76页 |
| 8.1.5 解旋酶与疾病 | 第76-77页 |
| 8.2 病毒解旋酶 | 第77-80页 |
| 8.2.1 SF1家族病毒解旋酶 | 第77-78页 |
| 8.2.2 SF2家族病毒解旋酶 | 第78页 |
| 8.2.3 SF3家族病毒解旋酶 | 第78页 |
| 8.2.4 解旋酶可以作为药物的靶点 | 第78-80页 |
| 8.3 展望 | 第80-82页 |
| 参考文献 | 第82-94页 |
| 致谢 | 第94-96页 |
| 作者简介 | 第96页 |
