| 摘要 | 第6-7页 |
| abstract | 第7页 |
| 英文缩略表 | 第11-12页 |
| 第一章 引言 | 第12-19页 |
| 1.1 弓形虫病概述 | 第12-15页 |
| 1.1.1 病原学特点 | 第12页 |
| 1.1.2 弓形虫生活史 | 第12-13页 |
| 1.1.3 弓形虫五种形态特征 | 第13-14页 |
| 1.1.4 弓形虫的流行病学特点 | 第14页 |
| 1.1.5 弓形虫致病特点 | 第14页 |
| 1.1.6 弓形虫病的预防与治疗 | 第14-15页 |
| 1.2 免疫蛋白酶体概述 | 第15-18页 |
| 1.2.1 机体蛋白质降解 | 第15页 |
| 1.2.2 免疫蛋白酶体结构 | 第15-16页 |
| 1.2.3 免疫蛋白酶体功能 | 第16页 |
| 1.2.4 免疫蛋白酶体在疾病中的研究 | 第16-18页 |
| 1.3 研究目的和意义 | 第18-19页 |
| 第二章 免疫蛋白酶体在弓形虫脑炎中的变化 | 第19-31页 |
| 2.1 材料与方法 | 第19-26页 |
| 2.1.1 弓形虫虫株、细胞及实验动物 | 第19页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第19页 |
| 2.1.3 主要仪器设备 | 第19-20页 |
| 2.1.4 实验设计 | 第20页 |
| 2.1.5 制备病理切片 | 第20-21页 |
| 2.1.6 免疫组织化学染色 | 第21-22页 |
| 2.1.7 脑组织DNA提取 | 第22页 |
| 2.1.8 巢式PCR扩增弓形虫B1 基因 | 第22-23页 |
| 2.1.9 琼脂糖凝胶成像 | 第23页 |
| 2.1.10 RT-qPCR检测脑组织中促炎性因子和免疫蛋白酶体的表达 | 第23-25页 |
| 2.1.11 Western Blot检测脑组织中免疫蛋白酶体的表达 | 第25-26页 |
| 2.2 结果 | 第26-29页 |
| 2.2.1 弓形虫人工感染小鼠模型的确立 | 第26-27页 |
| 2.2.2 弓形虫感染对促炎性因子表达的影响 | 第27-28页 |
| 2.2.3 弓形虫感染对免疫蛋白酶体表达的影响 | 第28-29页 |
| 2.3 讨论 | 第29-31页 |
| 第三章 脑内表达免疫蛋白酶体的细胞种类 | 第31-38页 |
| 3.1 材料与方法 | 第31-33页 |
| 3.1.1 弓形虫虫株、细胞和实验动物 | 第31页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第31页 |
| 3.1.3 主要仪器设备 | 第31页 |
| 3.1.4 实验设计 | 第31-32页 |
| 3.1.5 制作病理切片 | 第32页 |
| 3.1.6 免疫组织化学染色 | 第32页 |
| 3.1.7 双重免疫荧光染色 | 第32-33页 |
| 3.2 结果 | 第33-37页 |
| 3.2.1 弓形虫感染后小胶质细胞和星形胶质细胞的变化 | 第33-34页 |
| 3.2.2 脑中表达免疫蛋白酶体的细胞种类 | 第34-37页 |
| 3.3 讨论 | 第37-38页 |
| 第四章 MG-132 处理和LMP10 基因敲除影响促炎性因子表达 | 第38-46页 |
| 4.1 材料和方法 | 第38-39页 |
| 4.1.1 弓形虫虫株、细胞和实验动物 | 第38页 |
| 4.1.2 主要试剂和仪器设备 | 第38页 |
| 4.1.3 实验设计 | 第38页 |
| 4.1.4 HE染色 | 第38-39页 |
| 4.1.5 RT-qPCR检测脑内促炎性因子的表达 | 第39页 |
| 4.1.6 Western Blot检测脑内免疫蛋白酶体的表达 | 第39页 |
| 4.2 结果 | 第39-45页 |
| 4.2.1 T.gondii 免疫组化染色 | 第39-41页 |
| 4.2.2 Western Blot检测脑内免疫蛋白酶体的表达 | 第41页 |
| 4.2.3 脑部病理组织学观察 | 第41-42页 |
| 4.2.4 小胶质细胞免疫组化染色 | 第42-44页 |
| 4.2.5 MG-132 处理和LMP10 基因敲除对促炎性因子表达的影响 | 第44-45页 |
| 4.3 讨论 | 第45-46页 |
| 第五章 全文结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
| 作者简历 | 第54页 |
