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AcMNPV及宿主细胞Sf9中增殖细胞核抗原PCNA的功能研究

中文摘要第14-18页
ABSTRACT第18-23页
第一章 文献综述第24-46页
    1.1 杆状病毒第24-29页
        1.1.1 杆状病毒概述第24页
        1.1.2 杆状病毒分类地位第24页
        1.1.3 杆状病毒发育循环第24-26页
        1.1.4 杆状病毒病毒粒子相关蛋白分类第26-27页
        1.1.5 昆虫杆状病毒表达载体系统第27-29页
    1.2 杆状病毒基因组DNA复制和基因表达调控相关基因第29-31页
        1.2.1 杆状病毒DNA复制原点hr第29-30页
        1.2.2 杆状病毒基因表达调控的级联模型第30-31页
        1.2.3 早期表达调节基因:ie2第31页
    1.3 增殖细胞核抗原(Proliferating cell nuclear antigen,PCNA)第31-37页
        1.3.1 增殖细胞核抗原的发现与结构特征第31-32页
        1.3.2 增殖细胞核抗原的生物学功能第32-36页
        1.3.3 AcMNPV和Sf9细胞的增殖细胞核抗原第36-37页
    1.4 反式转录因子P53第37-40页
        1.4.1 病毒感染与宿主细胞凋亡第37-38页
        1.4.2 宿主细胞凋亡与P53蛋白第38-40页
    1.5 病毒感染与葡萄糖代谢第40-41页
        1.5.1 病毒感染对细胞葡萄糖转运的调节第40-41页
        1.5.2 病毒感染对细胞葡萄糖代谢的调节第41页
    1.6 昆虫杆状病毒表达载体系统的新进展第41-42页
    1.7 论文的设计思路第42-46页
        1.7.1 研究内容与意义第42-43页
        1.7.2 研究方法第43-44页
        1.7.3 实验流程第44页
        1.7.4 研究创新点第44-46页
第二章 重组杆状病毒AcMNPV-Ac/Sf-pcna-EGFP的构建与核蛋白Ac/Sf-PCNA-EGFP的表达分析第46-64页
    2.1 引言第46页
    2.2 实验材料第46-47页
        2.2.1 主要实验仪器第46-47页
        2.2.2 主要试剂及其配置第47页
        2.2.3 细胞、病毒、菌株及载体第47页
    2.3 实验方法第47-55页
        2.3.1 Ac/Sf-pcna的序列分析和其蛋白三维结构同源建模第47页
        2.3.2 昆虫Sf9细胞的培养第47-48页
        2.3.3 重组病毒AcMNPV-Ac/Sf-pcna-EGFP的构建第48-53页
        2.3.4 蚀斑法测定重组病毒AcMNPV-Ac/Sf-pcna-EGFP的滴度第53页
        2.3.5 荧光显微镜观察和Westernblot检测Ac/Sf-PCNA-EGFP在AcMNPV-Ac/Sf-pcna-EGFP感染的Sf9宿主细胞中的表达量第53-54页
        2.3.6 Western blot检测在AcMNPV-Ac/Sf-pcna-EGFP感染的Sf9宿主细胞中Ac/Sf-pcna-EGFP在核内的聚集情况第54-55页
    2.4 实验结果第55-63页
        2.4.1 Ac/Sf-pcna的序列分析及其蛋白三维结构模型第55-57页
        2.4.2 重组病毒AcMNPV-Ac-pcna-EGFP的构建第57-59页
        2.4.3 重组病毒AcMNPV-Sf-pcna-EGFP的构建第59-61页
        2.4.4 AcMNPV-Ac/Sf-pcna-EGFP感染的Sf9细胞中Ac/Sf-PCNA-EGFP的表达量分析第61-62页
        2.4.5 AcMNPV-Ac/Sf-pcna-EGFP感染的Sf9细胞中Ac/Sf-PCNA-EGFP在核内聚集的分析第62-63页
    2.5 讨论第63-64页
第三章 增殖细胞核抗原Ac/Sf-pcna的功能分析第64-82页
    3.1 引言第64页
    3.2 实验材料第64-65页
        3.2.1 主要实验仪器第64页
        3.2.2 主要试剂及其配制第64页
        3.2.3 细胞、病毒、菌株、载体和虫卵第64-65页
    3.3 实验方法第65-71页
        3.3.1 绝对定量PCR检测用标准质粒pUCm-T-hr3、pUCm-T-hsp90的构建第65-67页
        3.3.2 Sf9细胞的培养第67页
        3.3.3 绝对定量PCR检测在细胞内及外分泌的重组病毒的基因组DNA的复制水平第67-68页
        3.3.4 绝对定量PCR检测重组病毒对Sf9基因组DNA复制的影响第68-69页
        3.3.5 蚀斑实验检测重组杆状病毒AcMNPV-Ac/Sf-pcna-EGFP对子代病毒增殖的影响第69页
        3.3.6 Real-time PCR 检测重组杆状病毒Ac MNPV-Ac-pcna-EGFP对Ac MNPV晚期基因 38K、vp39转录水平的影响第69-71页
        3.3.7 Real-time PCR检测重组杆状病毒Ac MNPV-Ac-pcna-EGFP对Ac MNPV极早期基因ie2转录水平的影响第71页
        3.3.8 虫试实验检测重组杆状病毒AcMNPV-Ac/Sf-pcna-EGFP的抗虫活性第71页
    3.4 实验结果第71-78页
        3.4.1 绝对定量PCR检测用标准质粒pUCm-T-hr3和pUCm-T-hsp90的构建第71-73页
        3.4.2 重组病毒AcMNPV-Ac/Sf-pcna-EGFP对病毒基因组DNA复制的影响分析第73-74页
        3.4.3 重组病毒AcMNPV-Ac/Sf-pcna-EGFP对Sf9基因组DNA复制的影响分析第74-76页
        3.4.4 重组病毒AcMNPV-Ac/Sf-pcna-EGFP对子代病毒增殖的影响分析第76-77页
        3.4.5 增殖细胞核抗原Ac-pcna对AcMNPV晚期基因38K、vp39以及极早期基因ie2转录水平的影响分析第77-78页
        3.4.6 重组杆状病毒AcMNPV-Ac/Sf-pcna-EGFP的抗虫效率分析第78页
    3.5 讨论第78-82页
第四章 重组杆状病毒AcMNPV-Ac/Sf-pcna-EGFP对宿主Sf9细胞凋亡蛋白SfP53表达、葡萄糖代谢及外源蛋白表达的影响第82-94页
    4.1 引言第82页
    4.2 实验材料第82-83页
        4.2.1 主要实验仪器第82页
        4.2.2 主要试剂及其配置第82页
        4.2.3 细胞、病毒第82-83页
    4.3 实验方法第83-86页
        4.3.1 Sf9细胞的培养第83页
        4.3.2 Western blot分析重组病毒AcMNPV-Ac/Sf-pcna-EGFP感染的Sf9细胞中SfP53的表达第83页
        4.3.3 Western blot分析重组病毒AcMNPV-Ac/Sf-pcna-EGFP感染的Sf9细胞中核内SfP53的积累第83-84页
        4.3.4 重组病毒AcMNPV-Ac/Sf-pcna-EGFP感染的Sf9细胞中葡萄糖含量的分析第84-85页
        4.3.5 Western blot分析不同感染复数的AcMNPV-Ac/Sf-pcna-EGFP感染的Sf9细胞中外源蛋白Renilla Luciferase的表达第85页
        4.3.6 Western blot分析在AcMNPV-Ac/Sf-pcna-EGFP感染Sf9细胞的过程中外源蛋白Renilla Luciferase的表达第85-86页
    4.4 实验结果第86-92页
        4.4.1 重组病毒AcMNPV-Ac/Sf-pcna-EGFP感染的Sf9细胞中SfP53的表达量分析第86页
        4.4.2 重组病毒AcMNPV-Ac/Sf-pcna-EGFP感染的Sf9细胞中核内SfP53的积累分析第86-88页
        4.4.3 重组病毒AcMNPV-Ac/Sf-pcna-EGFP感染的Sf9细胞中葡萄糖含量的分析第88-89页
        4.4.4 不同感染复数的AcMNPV-Ac/Sf-pcna-EGFP感染的Sf9细胞中外源蛋白Renilla Luciferase的表达量分析第89页
        4.4.5 在AcMNPV-Ac/Sf-pcna-EGFP感染Sf9细胞的过程中外源蛋白Renilla Luciferase的表达量分析第89-92页
    4.5 讨论第92-94页
总结与展望第94-97页
参考文献第97-108页
附录第108-114页
攻读学位期间发表的学术论文第114-115页
致谢第115-116页
个人简况及联系方式第116-119页

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