| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第12-22页 |
| 1.1 DNA化学组成及基本结构 | 第12-13页 |
| 1.2 DNA链交换反应 | 第13-15页 |
| 1.3 DNA分子机器 | 第15-18页 |
| 1.4 双偏振干涉测量技术(DPD | 第18-19页 |
| 1.5 微流控技术原理和结构 | 第19-22页 |
| 第二章 基于toehold协助下芯片表面增强单碱基突变检测 | 第22-54页 |
| 2.1 前言 | 第22-23页 |
| 2.2 实验部分 | 第23-31页 |
| 2.2.1 实验原料与样品处理 | 第23-25页 |
| 2.2.2 芯片清洗和表面修饰 | 第25-26页 |
| 2.2.3 DPI研究单碱基突变的实验过程 | 第26-29页 |
| 2.2.4 荧光实验研究溶液中链替换反应 | 第29页 |
| 2.2.5 电泳(PAGE)实验研究溶液中链替换反应 | 第29-30页 |
| 2.2.6 简易DNA微阵列高通量单碱基突变检测 | 第30-31页 |
| 2.3 结果与分析 | 第31-51页 |
| 2.3.1 6/5 toehold方案下的链替换反应中双链DNA“toehold交换探针”的设计 | 第31-32页 |
| 2.3.2 DNA序列不同突变位点的链替换反应进程的研究 | 第32-35页 |
| 2.3.3 DNA序列不同突变类型的链替换反应进程研究 | 第35-38页 |
| 2.3.4 芯片表面和溶液中toehold链替换效率的比较 | 第38-42页 |
| 2.3.5 表面不同的接枝密度对链替换反应效率的影响 | 第42-45页 |
| 2.3.6 流动和静态体系对链替换反应效率的影响 | 第45-46页 |
| 2.3.7 芯片表面和溶液中不同toehold方案设计的双链探针对链替换反应的影响 | 第46-48页 |
| 2.3.8 toehold协助下的表面检测单碱基突变方法的检测限及普适性研究 | 第48-50页 |
| 2.3.9 DNA微阵列技术进行高通量单碱基突变检测的评价 | 第50-51页 |
| 2.4 本章小结 | 第51-54页 |
| 第三章 基于微流控DNA微阵列技术在芯片表面构建DNA信号放大传感器及“AND”逻辑门 | 第54-64页 |
| 3.1 引言 | 第54-55页 |
| 3.2 实验过程 | 第55-59页 |
| 3.2.1 实验试剂和样品预处理 | 第55-56页 |
| 3.2.2 醛基玻璃芯片和PDMS微通道基片制备 | 第56-57页 |
| 3.2.3 芯片表面线性探针阵列的制备 | 第57页 |
| 3.2.4 样品杂交以及共聚焦荧光显微镜观察 | 第57-58页 |
| 3.2.5 DNA信号放大传感器实验 | 第58页 |
| 3.2.6 “AND”逻辑门实验 | 第58-59页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第59-62页 |
| 3.3.1 toehold方案的设计及AuNPs的引入原因分析 | 第59-60页 |
| 3.3.2 DNA信号放大传感器的构建分析 | 第60-61页 |
| 3.3.3 “AND”逻辑门的构建分析 | 第61-62页 |
| 3.4 本章小结 | 第62-64页 |
| 第四章 微流控通道中液滴的图案化排列和转变 | 第64-78页 |
| 4.1 引言 | 第64-65页 |
| 4.2 实验过程 | 第65-67页 |
| 4.2.1 实验原料 | 第65页 |
| 4.2.2 微流控芯片制作 | 第65页 |
| 4.2.3 液滴乳化实验 | 第65-67页 |
| 4.3 结果和讨论 | 第67-76页 |
| 4.3.1 微通道宽度为250μm和300μm时液滴的图案化排列现象 | 第67-71页 |
| 4.3.2 微通道宽度为350μm和400μm时液滴的图案化排列现象 | 第71-76页 |
| 4.4 本章小结 | 第76-78页 |
| 第五章 结论与展望 | 第78-80页 |
| 参考文献 | 第80-98页 |
| 附录A 双偏振干涉测量技术(DPI)简介 | 第98-104页 |
| 附录B 微流控技术简介 | 第104-112页 |
| 致谢 | 第112-114页 |
| 在读期间发表的学术论文和取得的研究成果 | 第114页 |
