| 第一部分 大鼠坐骨神经损伤后Wallerian溃变过程中的蛋白表达变化 | 第6-28页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 第一章 绪论 | 第11-13页 |
| 第二章 材料与方法 | 第13-16页 |
| 1. 实验动物 | 第13页 |
| 2. 大鼠坐骨神经损伤模型的建立 | 第13页 |
| 3. 蛋白提取和定量 | 第13页 |
| 4. 生物信息学分析 | 第13-14页 |
| 5. Real-time PCR分析 | 第14页 |
| 6. Western Blot分析 | 第14-15页 |
| 7. 统计学分析 | 第15-16页 |
| 第三章 结果 | 第16-22页 |
| 1. GO分析 | 第16-17页 |
| 2. WD过程中差异表达蛋白的信号通路分析 | 第17-18页 |
| 3. WD过程中差异表达蛋白的KEGG Cluster聚类分析 | 第18页 |
| 4. WD过程中差异表达蛋白的信号流分析 | 第18-19页 |
| 5. Real-time PCR分析 | 第19-20页 |
| 6. Western Blot分析 | 第20-22页 |
| 第四章 讨论 | 第22-25页 |
| 第五章 结论 | 第25-26页 |
| 参考文献 | 第26-28页 |
| 第二部分TGF-β1 在大鼠坐骨神经损伤后Wallerian溃变过程中的作用研究 | 第28-72页 |
| 摘要 | 第28-30页 |
| Abstract | 第30-32页 |
| 第一章 绪论 | 第32-34页 |
| 第二章 材料与方法 | 第34-49页 |
| 2.1 材料 | 第34-38页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第34页 |
| 2.1.2 实验主要试剂 | 第34-37页 |
| 2.1.3 实验主要仪器 | 第37-38页 |
| 2.2. 实验方法 | 第38-49页 |
| 2.2.1 形态学实验 | 第38-39页 |
| 2.2.2 免疫荧光双标染色 | 第39页 |
| 2.2.3 细胞培养 | 第39-40页 |
| 2.2.4 细胞转染 | 第40-42页 |
| 2.2.5 RNA提取及cDNA合成 | 第42-43页 |
| 2.2.6 Real-time PCR分析 | 第43-44页 |
| 2.2.7 Western Blot分析 | 第44-46页 |
| 2.2.8 SCs增殖（EdU）分析 | 第46-47页 |
| 2.2.9 SCs迁移（Transwell）分析 | 第47-48页 |
| 2.2.10 SCs凋亡分析 | 第48页 |
| 2.2.11统计学分析 | 第48-49页 |
| 第三章 结果 | 第49-66页 |
| 3.1 形态学观察 | 第49页 |
| 3.2 免疫荧光双标定位 | 第49-50页 |
| 3.3 SCs培养 | 第50-53页 |
| 3.3.1 SCs培养及纯化 | 第51页 |
| 3.3.2 细胞免疫荧光鉴定SCs纯度 | 第51-52页 |
| 3.3.3 细胞免疫荧光双标共定位 | 第52-53页 |
| 3.4 细胞转染 | 第53-56页 |
| 3.4.1 si RNA转染SCs | 第53-54页 |
| 3.4.2 TGF-β1 过表达重组质粒转染SCs | 第54-56页 |
| 3.5 SCs增殖 | 第56-57页 |
| 3.6 SCs迁移 | 第57-58页 |
| 3.7 SCs凋亡 | 第58-59页 |
| 3.8 SCs中相关基因的差异性表达 | 第59-61页 |
| 3.9 SCs中相关蛋白的差异性表达 | 第61-66页 |
| 第四章 讨论 | 第66-68页 |
| 第五章 结论 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-72页 |
| 英文缩写词表 | 第72-74页 |
| 综述 | 第74-87页 |
| 综述参考文献 | 第82-87页 |
| 硕士期间公开发表的论文 | 第87页 |
| 在攻读硕士学位期间负责的课题 | 第87-90页 |
| 致谢 | 第90页 |
