杨树花总黄酮的制备及高效液相色谱法指纹图谱的建立
| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 1 引言 | 第12-20页 |
| 1.1 杨树花的研究进展 | 第12-13页 |
| 1.1.1 杨树花的化学成分 | 第12页 |
| 1.1.2 杨树花的生物活性 | 第12-13页 |
| 1.1.3 杨树花的提取方法 | 第13页 |
| 1.2 黄酮类化合物的研究进展 | 第13-17页 |
| 1.2.1 黄酮的结构与分类 | 第13-14页 |
| 1.2.2 黄酮的生物活性 | 第14-15页 |
| 1.2.3 黄酮的提取 | 第15-16页 |
| 1.2.4 黄酮的分离纯化 | 第16-17页 |
| 1.3 中药指纹图谱的研究 | 第17-19页 |
| 1.3.1 色谱指纹技术 | 第17-18页 |
| 1.3.2 光谱指纹技术 | 第18页 |
| 1.3.3 质谱指纹技术 | 第18-19页 |
| 1.4 研究目的和意义 | 第19-20页 |
| 2 材料与方法 | 第20-26页 |
| 2.1 材料 | 第20-21页 |
| 2.1.1 试剂 | 第20页 |
| 2.1.2 仪器 | 第20-21页 |
| 2.2 方法 | 第21-26页 |
| 2.2.1 响应面法优化杨树花总黄酮的提取工艺 | 第21-22页 |
| 2.2.2 大孔树脂法富集杨树花总黄酮 | 第22-24页 |
| 2.2.3 杨树花指纹图谱的建立 | 第24-26页 |
| 3 结果与分析 | 第26-48页 |
| 3.1 响应面法优化杨树花总黄酮提取工艺 | 第26-33页 |
| 3.1.1 提取温度对提取率的影响 | 第26页 |
| 3.1.2 乙醇浓度对提取率的影响 | 第26页 |
| 3.1.3 液料比对提取率的影响 | 第26页 |
| 3.1.4 提取时间对提取率的影响 | 第26页 |
| 3.1.5 提取次数对提取率的影响 | 第26-29页 |
| 3.1.6 工艺优化结果 | 第29-33页 |
| 3.1.7 优化参数和验证试验 | 第33页 |
| 3.2 大孔树脂法富集杨树花总黄酮 | 第33-36页 |
| 3.2.1 吸附与解吸试验 | 第33-34页 |
| 3.2.2 pH对吸附的影响 | 第34页 |
| 3.2.3 吸附动力学 | 第34页 |
| 3.2.4 吸附等温曲线 | 第34-35页 |
| 3.2.5 上样速率 | 第35页 |
| 3.2.6 穿透曲线 | 第35页 |
| 3.2.7 梯度洗脱 | 第35-36页 |
| 3.2.8 工艺验证 | 第36页 |
| 3.3 杨树花质量控制方法的建立 | 第36-48页 |
| 3.3.1 色谱柱的选择 | 第36-37页 |
| 3.3.2 洗脱系统的选择 | 第37-39页 |
| 3.3.3 检测波长的选择 | 第39页 |
| 3.3.4 流动相梯度洗脱程序优化 | 第39-40页 |
| 3.3.5 参照物的选择 | 第40页 |
| 3.3.6 方法学考察 | 第40-44页 |
| 3.3.7 指纹图谱的建立和分析 | 第44-48页 |
| 4 讨论 | 第48-54页 |
| 4.1 响应面法优化杨树花总黄酮提取工艺 | 第48-50页 |
| 4.1.1 单因素试验 | 第48-49页 |
| 4.1.2 响应面讨论 | 第49-50页 |
| 4.2 大孔树脂法富集杨树花总黄酮 | 第50-51页 |
| 4.2.1 纯化方法讨论 | 第50页 |
| 4.2.2 大孔树脂吸附特性 | 第50-51页 |
| 4.3 杨树花提取物指纹图谱 | 第51-54页 |
| 4.3.1 HPLC色谱条件优化 | 第52页 |
| 4.3.2 参照物选择 | 第52页 |
| 4.3.3 方法学考察 | 第52页 |
| 4.3.4 指纹图谱建立与分析 | 第52-54页 |
| 5 结论 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-63页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第63页 |
