摘要 | 第5-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
0 前言 | 第11-12页 |
1 绪论 | 第12-23页 |
1.1 絮凝技术与絮凝剂概述 | 第12页 |
1.2 微生物絮凝剂 | 第12-16页 |
1.2.1 微生物絮凝剂的分类 | 第13页 |
1.2.2 微生物絮凝剂的絮凝机理 | 第13-14页 |
1.2.3 微生物絮凝剂产生生物 | 第14-15页 |
1.2.4 微生物絮凝剂应用现状 | 第15页 |
1.2.5 存在的问题和发展趋势 | 第15-16页 |
1.3 胞外聚合物概述 | 第16-19页 |
1.3.1 胞外聚合物的组成及特点 | 第16-17页 |
1.3.2 胞外聚合物的提取方法 | 第17-18页 |
1.3.3 影响胞外聚合物的因素 | 第18页 |
1.3.4 胞外聚合物的应用 | 第18-19页 |
1.4 胞外多糖概述 | 第19-21页 |
1.4.1 微生物胞外多糖的分类 | 第19页 |
1.4.2 微生物胞外多糖产生菌 | 第19-20页 |
1.4.3 微生物胞外多糖的应用 | 第20-21页 |
1.4.4 微生物胞外多糖的纯化和研究方法 | 第21页 |
1.5 本课题的研究内容及意义 | 第21-23页 |
2 响应曲面法优化丝状真菌 Aspergillus niger A80 絮凝培养条件 | 第23-37页 |
2.1 引言 | 第23页 |
2.2 材料与方法 | 第23-27页 |
2.2.1 实验材料 | 第23-24页 |
2.2.2 实验方法 | 第24-27页 |
2.3 结果与讨论 | 第27-35页 |
2.3.1 丝状真菌 Aspergillus niger A80 絮凝培养条件的单因子优化 | 第27-31页 |
2.3.2 中心组合试验 | 第31-35页 |
2.4 小结 | 第35-37页 |
3 丝状真菌 Aspergillus niger A80 胞外聚合物的提取与化学组成 | 第37-45页 |
3.1 引言 | 第37页 |
3.2 材料与方法 | 第37-40页 |
3.2.1 实验试剂 | 第37-38页 |
3.2.2 实验方法 | 第38-40页 |
3.3 结果与讨论 | 第40-44页 |
3.3.1 丝状真菌 Aspergillus niger A80 ECP 提取方法比较 | 第40-41页 |
3.3.2 丝状真菌 Aspergillus niger A80 ECP 形貌特征 | 第41-42页 |
3.3.3 丝状真菌 Aspergillus niger A80 ECP 官能团 | 第42页 |
3.3.4 丝状真菌 Aspergillus niger A80 ECP 分子量分布 | 第42-43页 |
3.3.5 丝状真菌 Aspergillus niger A80 ECP 组成分析 | 第43-44页 |
3.4 小结 | 第44-45页 |
4 丝状真菌 Aspergillus nigerA80 胞外多糖的分离纯化及分子结构 | 第45-60页 |
4.1 引言 | 第45页 |
4.2 材料与方法 | 第45-49页 |
4.2.1 实验试剂 | 第45-46页 |
4.2.2 实验方法 | 第46-49页 |
4.3 结果与讨论 | 第49-59页 |
4.3.1 胞外多糖的分离纯化 | 第49-51页 |
4.3.2 分子量测定及纯度检验 | 第51页 |
4.3.3 多糖组分测定 | 第51-52页 |
4.3.4 甲基化分析 | 第52-56页 |
4.3.5 核磁共振分析 | 第56-59页 |
4.4 小结 | 第59-60页 |
5 絮凝剂 A80 对猪场冲洗废水的处理效果 | 第60-69页 |
5.1 引言 | 第60-61页 |
5.2 材料与方法 | 第61-62页 |
5.2.1 猪场废水 | 第61页 |
5.2.2 实验试剂 | 第61页 |
5.2.3 实验方法 | 第61-62页 |
5.3 结果与讨论 | 第62-68页 |
5.3.1 pH 对絮凝效果的影响 | 第62-64页 |
5.3.2 发酵液加入量对絮凝效果的影响 | 第64-66页 |
5.3.3 CaCl_2加入量对絮凝效果的影响 | 第66-68页 |
5.4 小结 | 第68-69页 |
6 结论与展望 | 第69-71页 |
6.1 结论 | 第69-70页 |
6.2 展望 | 第70-71页 |
参考文献 | 第71-79页 |
附录 | 第79-80页 |
致谢 | 第80-81页 |
个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第81-82页 |