| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 第1章 绪论 | 第20-52页 |
| 1.1 环境缺氧 | 第20-21页 |
| 1.2 环境成像分析技术 | 第21-22页 |
| 1.3 荧光探针的设计 | 第22-31页 |
| 1.3.1 荧光探针的组成 | 第22-23页 |
| 1.3.2 荧光探针的分类 | 第23-26页 |
| 1.3.3 荧光探针的设计机理 | 第26-31页 |
| 1.4 用于检测硫烷硫的荧光探针 | 第31-40页 |
| 1.4.1 用于检测硫烷硫的荧光探针 | 第31-32页 |
| 1.4.2 用于检测多硫化氢的荧光探针 | 第32-39页 |
| 1.4.3 用于检测多硫化半胱氨酸的荧光探针 | 第39-40页 |
| 1.5 荧光探针在环境分析中的应用 | 第40-49页 |
| 1.5.1 用于检测重金属的荧光探针 | 第40-43页 |
| 1.5.2 用于检测环境中污染物的荧光探针 | 第43-46页 |
| 1.5.3 用于检测缺氧环境的荧光探针 | 第46-47页 |
| 1.5.4 用于检测环境胁迫下细胞内活性物种的荧光探针 | 第47-49页 |
| 1.6 本文的研究思路及研究内容 | 第49-52页 |
| 第2章 近红外荧光探针的设计及其在急性脑缺血小鼠硫烷硫检测中的应用 | 第52-74页 |
| 2.1 引言 | 第52-53页 |
| 2.2 实验部分 | 第53-57页 |
| 2.2.1 试剂与材料 | 第53-54页 |
| 2.2.2 仪器 | 第54页 |
| 2.2.3 探针光谱分析 | 第54页 |
| 2.2.4 细胞培养 | 第54-55页 |
| 2.2.5 细胞毒性实验 | 第55页 |
| 2.2.6 激光共聚焦显微镜成像 | 第55页 |
| 2.2.7 小鼠实验 | 第55-56页 |
| 2.2.8 探针的合成 | 第56-57页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第57-72页 |
| 2.3.1 探针Mito-SH的设计 | 第57页 |
| 2.3.2 探针Mito-SH的光谱特性 | 第57-59页 |
| 2.3.3 探针Mito-SH的选择性 | 第59页 |
| 2.3.4 探针Mito-SH的细胞毒性 | 第59-60页 |
| 2.3.5 探针Mito-SH对活细胞内硫烷硫检测的特异性 | 第60-63页 |
| 2.3.6 探针Mito-SH的线粒体定位 | 第63-64页 |
| 2.3.7 探针Mito-SH对氧-糖剥夺细胞内氧化还原状态的评估 | 第64-68页 |
| 2.3.8 探针Mito-SH用于活体成像 | 第68-72页 |
| 2.4 小结 | 第72-74页 |
| 第3章 含硒近红外荧光探针的设计及其在环境缺氧胁迫下细胞及活体内硫烷硫检测中的应用 | 第74-90页 |
| 3.1 引言 | 第74-75页 |
| 3.2 实验部分 | 第75-77页 |
| 3.2.0 试剂与材料 | 第75页 |
| 3.2.1 仪器 | 第75页 |
| 3.2.2 探针光谱分析 | 第75-76页 |
| 3.2.3 细胞培养与激光共聚焦成像 | 第76页 |
| 3.2.4 多细胞球体的培养 | 第76页 |
| 3.2.5 小鼠实验 | 第76页 |
| 3.2.6 探针的合成 | 第76-77页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第77-89页 |
| 3.3.1 探针BD-diSeH的设计策略 | 第77-78页 |
| 3.3.2 探针BD-diSeH的光谱分析 | 第78-79页 |
| 3.3.3 探针BD-diSeH的选择性 | 第79-80页 |
| 3.3.4 探针BD-diSeH的光稳定性和细胞毒性实验 | 第80-81页 |
| 3.3.5 探针BD-diSeH成像细胞中的硫烷硫 | 第81-83页 |
| 3.3.6 缺氧胁迫对细胞内硫烷硫的影响 | 第83-85页 |
| 3.3.7 探针BD-diSeH成像三维多细胞球中的硫烷硫 | 第85-86页 |
| 3.3.8 探针BD-diSeH在缺氧脑组织中成像硫烷硫 | 第86-87页 |
| 3.3.9 探针BD-diSeH在小鼠腹腔中成像硫烷硫 | 第87-88页 |
| 3.3.10 探针BD-diSeH在斑马鱼中成像硫烷硫 | 第88-89页 |
| 3.4 小结 | 第89-90页 |
| 第4章 含硒线粒体靶向的近红外荧光探针在评估缺氧胁迫下细胞及活体内硫烷硫水平及生理功能中的应用 | 第90-108页 |
| 4.1 引言 | 第90-91页 |
| 4.2 实验部分 | 第91-92页 |
| 4.2.1 试剂与材料 | 第91页 |
| 4.2.2 仪器 | 第91页 |
| 4.2.3 细胞培养 | 第91页 |
| 4.2.4 小鼠实验 | 第91-92页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第92-107页 |
| 4.3.1 探针Mito-SeH成像细胞线粒体内硫烷硫 | 第92-94页 |
| 4.3.2 探针Mito-SeH检测缺氧胁迫下细胞内硫烷硫变化 | 第94-97页 |
| 4.3.3 评估硫烷硫在缺氧胁迫下的生理作用 | 第97-99页 |
| 4.3.4 探针Mito-SeH成像缺氧模型中硫烷硫的分布 | 第99-101页 |
| 4.3.5 探针Mito-SeH在小鼠腹腔中成像硫烷硫 | 第101-102页 |
| 4.3.6 探针Mito-SeH定量小鼠缺氧模型中硫烷硫 | 第102-104页 |
| 4.3.7 探针Mito-SeH成像急性缺血小鼠模型中的硫烷硫 | 第104-106页 |
| 4.3.8 探针Mito-SeH成像斑马鱼中的硫烷硫 | 第106-107页 |
| 4.4 小结 | 第107-108页 |
| 第5章 近红外荧光探针的设计及其在缺氧胁迫下超氧阴离子和多硫化氢联动检测中的应用 | 第108-124页 |
| 5.1 引言 | 第108-109页 |
| 5.2 实验部分 | 第109-112页 |
| 5.2.1 试剂与材料 | 第109-110页 |
| 5.2.2 仪器 | 第110页 |
| 5.2.3 探针光谱分析 | 第110页 |
| 5.2.4 细胞培养与激光共聚焦成像 | 第110-111页 |
| 5.2.5 小鼠实验 | 第111页 |
| 5.2.6 探针的合成 | 第111-112页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第112-123页 |
| 5.3.1 探针HCy-ONO设计策略 | 第112页 |
| 5.3.2 探针HCy-ONO和Cy-ONO的光谱性质 | 第112-114页 |
| 5.3.3 探针HCy-ONO和Cy-ONO的选择性 | 第114-115页 |
| 5.3.4 探针HCy-ONO和Cy-ONO对细胞内O_2~(·-)和H_2Sn检测的特异性 | 第115-117页 |
| 5.3.5 探针HCy-ONO在持续缺氧条件下监测细胞内O_2~(·-)和H_2Sn之间的交互响应 | 第117-118页 |
| 5.3.6 探针HCy-ONO在间歇缺氧条件下监测细胞内O_2~(·-)和H_2Sn之间的交互响应 | 第118-120页 |
| 5.3.7 探针HCy-ONO用于活体成像 | 第120-122页 |
| 5.3.8 探针HCy-ONO用于肿瘤成像 | 第122-123页 |
| 5.4 小结 | 第123-124页 |
| 第6章 近红外“发夹”荧光探针的设计及其在肿瘤成像中的应用 | 第124-136页 |
| 6.1 引言 | 第124-125页 |
| 6.2 实验部分 | 第125-128页 |
| 6.2.1 试剂与材料 | 第125-126页 |
| 6.2.2 仪器 | 第126页 |
| 6.2.3 探针光谱分析 | 第126页 |
| 6.2.4 细胞培养与激光共聚焦成像 | 第126-127页 |
| 6.2.5 细胞毒性实验 | 第127页 |
| 6.2.6 小鼠实验 | 第127页 |
| 6.2.7 探针的合成 | 第127-128页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第128-135页 |
| 6.3.1 探针YLS设计策略 | 第128-129页 |
| 6.3.2 探针YLS的光谱性质 | 第129-130页 |
| 6.3.3 探针YLS的选择性 | 第130-131页 |
| 6.3.4 探针YLS在细胞中成像硫氧还蛋白还原酶 | 第131-132页 |
| 6.3.5 探针YLS的生理作用 | 第132-134页 |
| 6.3.6 探针YLS用于肿瘤成像 | 第134-135页 |
| 6.4 小结 | 第135-136页 |
| 第7章 全文总结与展望 | 第136-140页 |
| 7.1 全文总结 | 第136-138页 |
| 7.2 展望 | 第138-140页 |
| 参考文献 | 第140-164页 |
| 致谢 | 第164-166页 |
| 作者简历及攻读学位期间发表的学术论文与研究成果 | 第166-167页 |
