| 英文缩略词表 | 第7-8页 |
| 中文摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 第1章 文献回顾 | 第12-20页 |
| 1.1 骨组织工程概述 | 第12页 |
| 1.2 基质干细胞 | 第12页 |
| 1.3 提高 MSCs 成骨能力的因素 | 第12-20页 |
| 1.3.1 应力刺激 | 第12-13页 |
| 1.3.2 药物的作用 | 第13-14页 |
| 1.3.3 生物活性因子的作用 | 第14-16页 |
| 1.3.4 支架材料的作用 | 第16-19页 |
| 1.3.5 本研究的思路 | 第19-20页 |
| 第2章 诱导的血管内皮细胞对兔骨髓基质干细胞成骨分化作用的研究 | 第20-30页 |
| 2.1 前言 | 第20页 |
| 2.2 实验与方法 | 第20-22页 |
| 2.2.1 PLGA 支架材料的制备 | 第20页 |
| 2.2.2 兔 BMSCs 的分离及 ECs 的诱导分化与鉴定 | 第20-21页 |
| 2.2.3 体外构建 BMSCs 和 ECs 共培养模型 | 第21页 |
| 2.2.4 碱性磷酸酶（ALP）染色及茜素红(AZR)染色 | 第21页 |
| 2.2.5 体内建立兔下颌骨缺损植入模型 | 第21-22页 |
| 2.2.6 影像学检测 | 第22页 |
| 2.2.7 组织学分析 | 第22页 |
| 2.3 实验结果 | 第22-28页 |
| 2.3.1 PLGA 支架材料的特性及生物学相容性 | 第22页 |
| 2.3.2 BMSCs 的培养 | 第22页 |
| 2.3.3 诱导 ECs 的鉴定 | 第22-23页 |
| 2.3.4 体外共培养 ECs 对 MSCs 的成骨分化作用 | 第23页 |
| 2.3.5 放射线检测结果 | 第23-26页 |
| 2.3.6 组织学分析 | 第26-28页 |
| 2.4 讨论 | 第28-29页 |
| 2.5 结论 | 第29-30页 |
| 第3章 α -TCP 的制备及其物理化学性能的表征 | 第30-36页 |
| 3.1 前言 | 第30页 |
| 3.2 实验方法 | 第30-31页 |
| 3.2.1 试剂与仪器 | 第30-31页 |
| 3.2.2 α -TCP 的制备 | 第31页 |
| 3.2.3 实验过程 | 第31页 |
| 3.2.4 XRD 测试 | 第31页 |
| 3.2.5 SEM 测试 | 第31页 |
| 3.2.6 TEM测试 | 第31页 |
| 3.2.7 氮气吸附实验 | 第31页 |
| 3.3 实验结果 | 第31-34页 |
| 3.3.1 XRD 分析 | 第31-32页 |
| 3.3.2 SEM 分析 | 第32页 |
| 3.3.3 TEM 分析 | 第32-33页 |
| 3.3.4 氮气吸附实验分析 | 第33-34页 |
| 3.4 讨论 | 第34-35页 |
| 3.5 结论 | 第35-36页 |
| 第4章 α -TCP 对大鼠 BMSCs 成骨分化作用的体外研究 | 第36-46页 |
| 4.1 前言 | 第36页 |
| 4.2 实验方法 | 第36-39页 |
| 4.2.1 α -TCP 的合成 | 第36页 |
| 4.2.2 大鼠 BMSCs 的培养 | 第36-37页 |
| 4.2.3 MTT 检测 | 第37页 |
| 4.2.4 Real-time PCR 的检测 | 第37-39页 |
| 4.2.5 茜素红（AZR）染色 | 第39页 |
| 4.3 实验结果 | 第39-43页 |
| 4.3.1 大鼠 BMSCs 的形态学观察 | 第39-40页 |
| 4.3.2 MTT 结果 | 第40页 |
| 4.3.3 Real-time PCR 结果 | 第40-41页 |
| 4.3.4 茜素红染色结果 | 第41-43页 |
| 4.4 讨论 | 第43-45页 |
| 4.5 结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-54页 |
| 作者简介及在学期间取得的科研成果 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55页 |
