摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
1 文献综述 | 第10-23页 |
1.1 离子通道在肠道液体分泌中的作用 | 第10-11页 |
1.2 CFTR概述 | 第11-15页 |
1.2.1 CFTR的基因及蛋白结构 | 第11-12页 |
1.2.2 CFTR的突变种类 | 第12-13页 |
1.2.3 CFTR调节剂 | 第13页 |
1.2.4 CFTR的调节机制 | 第13页 |
1.2.5 CFTR突变相关疾病概述 | 第13-15页 |
1.3 Ca CCs的概述 | 第15-18页 |
1.3.1 Ca CCs的简介 | 第15页 |
1.3.2 Ca CCs的分子基础 | 第15-17页 |
1.3.3 Ca CCs的调节剂 | 第17页 |
1.3.4 Ca CCs的调节机制 | 第17-18页 |
1.3.5 Ca CCs生理功能及相关疾病概述 | 第18页 |
1.4 天然黄酮类化合物的概述 | 第18-21页 |
1.4.1 黄酮类化合物的简介 | 第18-19页 |
1.4.2 黄酮类化合物的生物活性功能 | 第19-21页 |
1.5 本研究黄酮类化合物的相关药理作用 | 第21-22页 |
1.5.1 本研究黄酮类化合物的简介 | 第21页 |
1.5.2 本研究黄酮类化合物的生物活性功能 | 第21-22页 |
1.6 本研究的目的意义 | 第22-23页 |
2 实验材料与方法 | 第23-27页 |
2.1 实验材料 | 第23页 |
2.1.1 实验设备 | 第23页 |
2.1.2 实验细胞 | 第23页 |
2.1.3 实验动物 | 第23页 |
2.1.4 主要试剂 | 第23页 |
2.2 实验方法 | 第23-27页 |
2.2.1 CFTR Cl~-通道细胞荧光测定模型的建立及测定 | 第23-24页 |
2.2.2 CFTR Cl~-通道小鼠结肠粘膜短路电流的测定方法 | 第24-25页 |
2.2.3 Ca CCs Cl~-氯离子通道细胞荧光测定模型的建立及测定 | 第25页 |
2.2.4 Ca CCs Cl~-通道小鼠结肠短路电流的测定方法 | 第25-26页 |
2.2.5 Ca CCs上皮细胞短路电流的测定 | 第26页 |
2.2.6 数据统计分析 | 第26-27页 |
3 结果与分析 | 第27-39页 |
3.1 黄酮类化合物对Wt-CFTR Cl~-通道的激活作用结果分析 | 第27-33页 |
3.1.1 黄酮类化合物对Wt-CFTR Cl~-通道激活作用的剂量依赖分析 | 第27-28页 |
3.1.2 黄酮类化合物对Wt-CFTR Cl~-通道激活作用的特异性分析 | 第28页 |
3.1.3 黄酮类化合物对Wt-CFTR Cl~-通道激活作用的时间依赖和可逆性分析 | 第28-29页 |
3.1.4 黄酮类化合物对Wt-CFTR Cl~-通道激活作用的机制分析 | 第29-31页 |
3.1.5 黄酮类化合物对CFTR小鼠结肠粘膜短路电流的测定 | 第31-33页 |
3.2 黄酮类化合物对Ca CCs氯离子通道的作用结果分析 | 第33-39页 |
3.2.1 黄酮类化合物对TMEM16A型Ca~(2+)激活氯离子通道抑制率的测定 | 第33-34页 |
3.2.2 黄酮类化合物对TMEM16A型Ca~(2+)激活氯离子通道时间依赖和可逆性分析 | 第34页 |
3.2.3 黄酮类化合物对TMEM16A型上皮细胞短路电流的结果分析 | 第34-36页 |
3.2.4 黄酮类化合物对上皮型Ca CCs小鼠结肠粘膜短路电流的测定 | 第36-39页 |
4 讨论 | 第39-41页 |
4.1 本研究中发现了几种新结构的黄酮类CFTR氯离子通道激活剂 | 第39页 |
4.2 发现白杨素和川陈皮素能够抑制TMEM16A和上皮型Ca CCs氯离子通道活性,发现了黄酮类化合物新靶点 | 第39-41页 |
结论 | 第41-42页 |
参考文献 | 第42-49页 |
攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第49-50页 |
致谢 | 第50页 |