摘要 | 第4-5页 |
ABSTRACT | 第5-6页 |
第一章 绪论 | 第10-19页 |
1.1 甜瓜种质资源的多样性 | 第10-12页 |
1.2 国内外植物品种DUS测试的发展现状 | 第12-14页 |
1.2.1 植物新品种DUS测试的概述 | 第13页 |
1.2.2 DUS测试方法 | 第13-14页 |
1.2.3 DUS测试在育种过程中存在的问题 | 第14页 |
1.3 分子标记技术在DUS测试中的应用 | 第14-15页 |
1.4 指纹图谱技术在DUS测试中的应用 | 第15-16页 |
1.5 DNA指纹图谱技术应用需解决的问题 | 第16页 |
1.6 本研究的目的和意义及研究内容 | 第16-19页 |
1.6.1 本研究的目的和意义 | 第16-17页 |
1.6.2 研究内容 | 第17-18页 |
1.6.3 技术路线 | 第18-19页 |
第二章 PCR扩增体系的优化及多重SSR-PCR体系的建立 | 第19-29页 |
2.1 PCR扩增体系的优化 | 第19-23页 |
2.1.1 试验材料 | 第19-20页 |
2.1.2 试验方法 | 第20-22页 |
2.1.3 结果与分析 | 第22-23页 |
2.2 多重SSR-PCR扩增体系的建立 | 第23-27页 |
2.2.1 试验材料 | 第23-24页 |
2.2.2 试验方法 | 第24-25页 |
2.2.3 结果与分析 | 第25-27页 |
2.3 讨论 | 第27-29页 |
第三章 SSR核心引物的筛选与确立 | 第29-36页 |
3.1 试验材料 | 第29-30页 |
3.2 试验方法 | 第30-31页 |
3.2.1 SSR引物的确定 | 第30页 |
3.2.2 数据记录与统计分析 | 第30-31页 |
3.3 结果与分析 | 第31-34页 |
3.3.1 候选引物的分布 | 第31-32页 |
3.3.2 核心引物的确定及多态性信息 | 第32-34页 |
3.4 讨论 | 第34-36页 |
第四章 部分甜瓜品种(系)指纹图谱的构建 | 第36-44页 |
4.1 试验材料 | 第36页 |
4.2 试验方法 | 第36-39页 |
4.2.1 指纹图谱代码 | 第36-39页 |
4.2.2 指纹图谱QR编码 | 第39页 |
4.3 结果与分析 | 第39-42页 |
4.3.1 甜瓜种质的指纹代码分析 | 第39-42页 |
4.3.2 指纹图谱QR编码 | 第42页 |
4.4 讨论 | 第42-44页 |
第五章 甜瓜种质遗传多样性分析 | 第44-60页 |
5.1 供试材料 | 第44-45页 |
5.2 试验方法 | 第45-47页 |
5.2.1 形态性状记录 | 第45-47页 |
5.2.2 形态学标记和SSR标记统计分析 | 第47页 |
5.3 结果与分析 | 第47-57页 |
5.3.1 基于形态学标记的聚类分析 | 第47-50页 |
5.3.2 基于SSR标记的聚类分析 | 第50-56页 |
5.3.3 形态学标记与SSR标记聚类结果的比较分析 | 第56-57页 |
5.4 讨论 | 第57-60页 |
5.4.1 基于形态学性状甜瓜遗传多样性的分析 | 第57-58页 |
5.4.2 基于SSR标记甜瓜遗传多样性的分析 | 第58-59页 |
5.4.3 基于SSR标记甜瓜遗传多样性的分析 | 第59-60页 |
第六章 甜瓜杂交种SSR指纹图谱构建与纯度鉴定 | 第60-66页 |
6.1 试验材料 | 第60-61页 |
6.2 试验方法 | 第61-62页 |
6.2.1 多态性引物的筛选 | 第62页 |
6.2.2 多态性引物在杂种纯度检测中的应用 | 第62页 |
6.3 结果与分析 | 第62-65页 |
6.3.1 用于16个甜瓜组合纯度鉴定的多态性引物 | 第62-64页 |
6.3.2 甜瓜杂交种的纯度鉴定 | 第64-65页 |
6.4 讨论 | 第65-66页 |
全文结论 | 第66-68页 |
参考文献 | 第68-77页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第77-78页 |
附录 | 第78-94页 |
致谢 | 第94-95页 |